Desarrollo de herramientas de tipificación y diagnóstico aplicadas al estudio de Mycoplasma hyorhinis y evaluación de un modelo experimental de neumonía en lechones
Abstract
Programa de doctorado: Sanidad Animal
Full text
Agradecimientos
Agradecimientos ComodiríaIsmaelSerrano,hoyessiempretodavía,todalavidaesahora,porqueayerno lohicimos,porquemañanaestarde…yahora,despuésdellargocaminorecorridohastapoder llegaraestepunto,haymuchaspersonasquedealgunaformauotrahanjugadounpapel importanteeneldesarrollodeestatesisyqueporlotantomegustaríaagradecerespecialmente: Amidirector,elDr.JoséB.PovedaGuerrero,porconcedermedesdeelprimermomentoy conelentusiasmoquelecaracterizalaoportunidaddeempezar,desarrollarycontinuarmi carrerainvestigadoraencienciasveterinarias. Amicodirectora,laDra.AnaSofíaRamírezCorbera,queapesardetodaslasidasy venidas,dificultadesymomentosdifícilesqueeldesarrollodeestatesishapresentadosiempre mehademostradosuapoyo,optimismoyamistad,actuandocomounfaro,unpuntode referenciaconstantedurantetodoelcaminosinelqueprobablementenohubierapodidollegar abuenpuerto. Iwouldliketoexpressmygratitudetomyco‐supervisorDr.RobinA.J.Nicholasforgiving metheopportunitytodevelopmycareerintheUK,“adopting”mefromthefirstmomentI arrivedandformakingmefeellikehomeduringmyBritishexperience.Hispersonalityand positiveoutlookonscienceandlifewillalwaysbelinkedtohissuccessandIwillalwaysfeel privilegedfortheknowledgeandexperienceacquiredduringthetimespentworkingwithhim. SpecialthankstoDr.RogerAylingforhisconstantunderstanding,support, encouragementandadviceduringalltheseyearswhichfacilitatedthecompletionofthisthesis.
Agradecimientos IwouldalsoliketothankColinChurchward,“Churchy”,forguidingmeduringmyfirst stepsinthelabatAHVLA,MiroslavHlúšekforallhishelpandtoallthecolleaguesinthe Mycoplasmagroupforalltheirassistanceprovidedalongtheway. APfizerporproporcionarelsoporteeconómicoparagranpartedeltrabajoexperimental realizadoenestatesis. AlaDra.RosarioGonçalves,“Rosarinho”,mimadreportuguesa,porsuamistadyapoyo queempezóenesosdurosprimerosmesesquepasamosjuntosaliniciodemiaventurainglesay quehemosseguidomanteniendohastalafecha. AlosDres.PatriciaAssunçãoyNunoAntunes,porsuayudadurantemisprimerospasos dentrodellaboratorioenGranCanaria,alDr.CarlosPovedaporlostiemposcompartidosenel laboratorioysuayudaenladistanciayatodoslosmiembrosdellaboratoriodeepidemiología quedealgunaformameayudaronduranteeliniciodeestatesis. AmiamigoelDr.AlejandroSuárez,portodosesosbuenosratos,recuerdos,experienciasy risasinolvidablesquedurantetodosestosañosmehanservidoparasobrellevarmuchos momentosdurosyaltibajosdentroyfueradellaboratorio. AAlessandraporaguantarmeyentendermedurantelaúltimafasedeestatesis,porque siemprehasidocapazdedarlotodosinimportarlenadaparaayudarmeyparaqueestatesis llegaraasufinyporcontagiarmesiempredesupositividad,alegríayenergíaúnica.
Agradecimientos Yporúltimoamispadresporsuconstanteapoyoyamor,porayudarmeaserquiensoyy porcreerenmíentodomomento.Amishermanosyatodamifamilia,porqueapesardela distanciasiempremehanhechosentirsupresenciayamor,sinelquesindudanadadeloquehe conseguidohastalafechahubierasidoposible.
Índice
Índice VIII 4.1.INTRODUCTION......................................................................................................................195 4.2.MATERIALANDMETHODS.....................................................................................................197 4.2.1.MycoplasmahyorhinisindirectELISA.................................................................................197 4.2.1.1.Generalchemicals,reagentsandequipment..............................................................197 4.2.1.2.Antigenpreparation.....................................................................................................199 4.2.1.3.Antigenchequerboardandconjugateselection..........................................................200 4.2.1.4.Testprocedure.............................................................................................................202 4.2.1.5.Sampleselection..........................................................................................................203 4.2.1.6.EstimationofthepredictiveabilityoftheELISAtest..................................................204 4.2.1.7.Kappa‐statisticmeasureofinter‐rateragreement(strengthofagreement)..............206 4.2.2.MycoplasmahyorhinisqPCR...............................................................................................207 4.2.2.1.Primerdesign...............................................................................................................207 4.2.2.2.Primerconcentrationevaluation.................................................................................208 4.2.2.3.Limitofdetection,efficiencyanddynamicrangeestimation.....................................210 4.2.2.3.1.Plasmidcontrolpreparation.................................................................................210 4.2.2.3.2.Limitofdetection,efficiencyanddynamicrangeestimationreactions...............216 4.2.2.4.EvaluationofclinicalandresearchDNAsamples........................................................217 4.3.RESULTS.................................................................................................................................221 4.3.1.ELISAdevelopment.............................................................................................................221 4.3.1.1.Antigenandconjugateselection.................................................................................221 4.3.1.2.EstimationofthepredictiveabilityoftheELISAtest..................................................222 4.3.1.3.Crossreactivity............................................................................................................224 4.3.1.4.Kappa‐statisticmeasureofinter‐rateragreement(strengthofagreement)..............224 4.3.2.MycoplasmahyorhinisqPCRdevelopment........................................................................226 4.3.2.1.Primerdesign...............................................................................................................226 4.3.2.2.Primerconcentrationevaluation.................................................................................227 4.3.2.3.Limitofdetection,efficiencyanddynamicrangeestimation.....................................227
Índice IX 4.3.2.4.EvaluationofclinicalandresearchDNAsamples........................................................229 4.4.DISCUSSION............................................................................................................................229 CHAPTER4–APPENDICES............................................................................................................237 APPENDIX4.1.CLONINGREAGENTS.............................................................................................239 APPENDIX4.2.QPCRRESULTS......................................................................................................242 5.CONCLUSIONES.........................................................................................................................251 6.RESUMEN..................................................................................................................................259 7.SUMMARY.................................................................................................................................265 REFERENCIASBIBLIOGRÁFICAS.....................................................................................................269
Índicedetablasyfiguras
Índicedetablas XIII Índicedetablas Tabla1.1.PrincipalescaracterísticasdelaclaseMollicutes……………………………….Pág.10 Tabla1.2.Principalesmicoplasmasporcinos……………………………………………………..Pág.18 Tabla1.3.Sistemadepuntuacióndelesionesmacroscópicaspulmonaresen cerdos……………………………………………………………………………………………….Pág.30 Tabla1.4.Principalestécnicasdetipificaciónmolecularempleadasen microbiología…………………………………………………………………………………….Pág.59 Tabla1.5.UsodePFGEparalatipificacióndelasprincipalesespecies patógenasdemicoplasmas……………………………………………………………….Pág.66 Tabla2.1.Volumendereactivosusadosparalapreparacióndegelesde acrilamida………………………………………………………………………………………….Pág.77 Tabla2.2.VolúmenesdereactivosempleadosporreaccióndeRAPD……………….Pág.81 Tabla2.3.CaracterísticasdelosoligonucleótidosseleccionadosparaelanálisisPág.92
Índicedetablas XIV deVNTR……………………………………………………………………………………………. Tabla2.4.VolúmenesdereactivosempleadosporreaccióndeVNTR………….......Pág.93 Tabla2.5.ClasificacióndelosaisladosanalizadosporlatécnicadeWestern blotbasadaenladiferenciasobservadasenlaregiónvariablede40 a46kDa…………………………………………………………………………………………….Pág.98 Tabla2.6.DistribucióndeaisladosportipodeRAPD…………………………………………Pág.103 Tabla2.7.Distribucióndepulsotipospororigengeográfico………………………………Pág.108 Tabla2.8.DistribucióndeaisladosporgruposdeSouthernblot.Elvalorentre paréntesisindicaelnúmerodecepasporeltotaldelrespectivo origen………………………………………………………………………………………………..Pág.113 Tabla2.9.DistribucióndeVTspororigen…………………………………………………………..Pág.116 Tabla2.10.IDSeICdecadaunadelastécnicasdetipificaciónevaluadas…………..Pág.118 Tabla2.11.AnálisisdelosnivelesdesignificaciónentreIDS(IC)delasdiferentesPág.118
Índicedetablas XV técnicasanalizadas Tabla2.12.Resultadosdelanálisisdeasociaciónentretécnicasdetipificación basadoenelcoeficienteajustadodeWallace……………………………………Pág.119 Tabla3.1.Puntuacióndelesionespulmonaresmacroscópicasbasadaenel sistemadevaloracióndelesionespulmonarescompatiblescon neumoníaenzoóticadescritoporGoodwinyWhittlestone(1973)…...Pág.163 Tabla3.2.Resultadosdelavaloraciónsemicuantitativadelesionespulmonares enpreparacioneshistológicas(Livingstonetal., 1972)………………………………………………………………………………………………...Pág.164 Tabla3.3.Resultadosdelanálisisdehisoposnasalesytejidopulmonarpor PCR/DGGE.aPositivoporPCR/DGGEfrenteaM.hyorhinisbPositivo porPCR/DGGEfrenteaM.hyopneumoniae………………………………………Pág.167 Tabla3.4.ResultadosdelELISAdebloqueoIDEIA™Mycoplasma hyopneumoniae.Lasmuestrassospechosasseencuentran resaltadasenamarillo.Lasmuestraspositivasseencuentran resaltadasenrojo……………………………………………………………………………..Pág.171
Índicedetablas XVI Table4.1.Platelayout–antigendilutions………………………………………………….........Pág.200 Table4.2.Platelayout–positiveandnegativeserumdistribution…………………….Pág.200 Table4.3.Platelayout–distributionsofdifferentconjugatedilutions………………Pág.201 Table4.4.InterpretationofKappa‐statisticmeasureofinter‐rateragreement values………………………………………………………………………………………………..Pág.207 Table4.5.M.hyorhinisqPCRprimercharacteristics………………………………………….Pág.208 Table4.6.FieldsamplesanalysedbyM.hyorhinisrpoBqPCR……………………………Pág.218 Table4.7.PCR/DGGEresultsfromnasalswabsandlungtissueobtainedafter experimentalinfection.aPositivebyPCR/DGGEagainstM.hyorhinis bPositivebyPCR/DGGEagainstM.hyopneumoniae………………………….Pág.219 Table4.8.ResearchsamplesanalysedbyM.hyorhinisrpoBqPCR…………………….Pág.220 Table4.9.CommonMycoplasmaspeciesreferencestrainsandporcine bacterialisolatesusedinM.hyorhinisqPCRspecificitytesting.a Pág.221
Índicedetablas XVII NCTCreferencestrain,bCourtesyofJonRogers(AHVLABurySt. Edmunds,UK) Table4.10.Positivecut‐offpointsandrelativespecificityandsensitivity…………….Pág.223 Table4.11.ContingencytablecomparingWesternBlottingandiELISApositive andnegativeresults…………………………………………………………………………Pág.223 Table4.12.Agreementcalculationbetweentwodifferentoperators………………….Pág.224 Table4.13.AgreementcalculationbetweeniELISArepeats…………………………………Pág.225 Table4.14.Antigenbatchvariationagreementcalculationbetweentworepeats ‐samplesetB(samples1to90)………………………………………..................Pág.225 Table4.15.Antigenbatchvariationagreementcalculationbetweentworepeats ‐samplesetB(samples91to180)…………………………………………………….Pág.225
Abreviaturas/Abbreviations
Abreviaturas/Abbreviations XXIII Abreviaturas Abbreviations AFLP Análisisdepolimorfismosenla longituddefragmentosamplificados deADN ‐ Amplifiedfragmentlength polymorphism ADNÁcidodesoxirribonuclelcoDNADesoxyribonucleicacid ARNÁcidoribonucleicoRNARibonucleicacid ARNr: ÁcidoribonucleicoribosomalrRNARibosomalribonucleicacid CqCiclodecuantificación‐ Quantificationcycle CRPComplejorespiratorioporcinoPRDCPorcinerespiratorydisease complex DaDalton‐ ‐ dNTPsDesoxirribonucleótidostrifosfato‐ Deoxyribonucleotidetriphosphate DPIDíaspostinfección‐ Dayspostinfection DTMDestetetempranomedicado MEWMedicatedEarlyWeaning gGramo‐ Gram hHoras‐ Hours HCIÁcidoclorhídrico‐ Hydrochloricacid HISHibridacioninsituISHInsituhybridization IHQInmunohistoquimicaIHCImmunohistochemistry IPTGIsopropil‐β‐D‐1‐tiogalactopiranósido‐ Isopropylβ‐D‐1‐ thiogalactopyranoside kbKilobase‐ ‐ KClCloruropotásico‐ Potassiumchloride kDaKilodalton‐ ‐ lLitro‐ Litre LBLuria‐Bertani ‐ ‐ MMolar‐ ‐ mMinutos‐ Minutes mAMiliamperio‐ Milliamps mAbAnticuerpomonoclonal‐ Monoclonalantibody mlMililitro‐ Millilitre MLSTTipificaciónmultilocusdesecuencias‐ Multilocussequencetyping mmMilímetro‐ Millimetre mMMilimolar‐ Millimolar MSTÁrbolrecubridormínimo‐ Minimumspanningtree NaClClorurosódico‐ Sodiumchloride NaOHHidróxidosódico‐ Sodiumhydroxide NCTCNationalCollectionofTypeCultures‐ ‐ NEPNeumoníaEnzoóticaPorcinaPENPorcineenzooticpneumonia ngNanogramo‐ Nanogram nmNanómetro‐ Nanometre nMNanomolar‐ ‐
Abreviaturas/Abbreviations XXIV pbParesdebasesbpBasepairs PBSBúferfosfatosalino ‐ Phosphatebuffersaline PCRReacciónencadenadelapolimerasa‐ Polymerasechainreaction PCR‐ RFLP Análisisdepolimorfismosenla longituddelosfragmentosde restriccióntrasPCR ‐ polimerasechainreaction‐ restrictionfragmentlength polymorphism PFGEElectroforesisengeldecampo pulsado‐ Pulsedfieldgelelectrophoresis PIPostinfección‐ Postinfection PRRSvVirusdelsíndromereproductivoy respiratorioporcino‐ Porcinereproductiveand respiratorysyndromevirus qPCRPCRcuantitativaatiemporeal‐ QuantitativerealtimePCR RAPDAmplificaciónaleatoriadeADN polimórfico‐ Randomamplifiedpolymorphic DNA rpmRevolucionesporminuto‐ Revolutionsperminute sSegundos‐ Seconds SBSouthernblotting‐ ‐ SDS‐ PAGE ElectroforesisenGelde PoliacrilamidaconDodecilSulfatode Sodio ‐ Sodiumdodecylsulfate polyacrylamidegelelectrophoresis SIVVirusdelainfluenzaporcina‐ Swineinfluenzavirus SOCCaldosúperóptimoconrepresión catabólica ‐ Superoptimalbrothwith cataboliterepression TBE Tris‐borato‐EDTA‐ Tris‐borate‐EDTA TD‐TFSistematododentro‐todofueraAIAOAll‐in,all‐outsystem UUnidades‐ Units UCCUnidadesCambiadorasdeColorCCUColor‐changingunits µgMicrogramo‐ Microgram µlMicrolitro‐ microlitre µmMicrómetro‐ Micrometre VVoltios‐ Volts VNTRAnálisisderepeticionesentándem denúmerovariable‐ Variablenumbertandemrepeat VTTipodeVNTR‐ VNTRtype WBWesternblotting‐ ‐ Legend:‐NovariationinEnglishlanguage
Capítulo1 Introducciónyrevisiónbibliográfica
CapítuloI‐Introducción 3 1.1. Introducción Laneumoníaenzoóticaporcina(NEP)destacacomounadelasprincipalesenfermedades queafectanalganadoporcino.Presentaunadistribuciónglobal,evidenciandounaalta morbilidadyunalimitadamortalidadasociadaprincipalmenteacombinacionescondiferentes patógenosporcinosinvolucradosgeneralmenteenelcomplejorespiratorioporcino(CRP). Debidoaestascaracterísticas,elprincipalinterésporestaenfermedadresideenlagran repercusióneconómicaenlaindustriaporcina,causandopérdidasmillonariasaproductoresde estesector.Mycoplasma(M.)hyopneumoniaehasidoconsideradocomoelprincipalagente etiológicodeestaenfermedad,aunquemúltiplesevidencias,tantodesdeelpuntodevista epidemiológicocomopatológico,hacenpensarqueM.hyorhinisjuegaunpapelsignificativoenla neumoníaenzoóticaporcinayenelCRP. M.hyorhinisesunmicroorganismocomensaldelaparatorespiratoriosuperiordelcerdo normalmenteasociadoconcuadrosdeartritis,otitis,pericarditisypoliserositis(Ross,1999). Ademásesconsideradocomounpatógenosecundarioencasosdeneumoníaencerdossinque supapelcomoagenteetiológicoprimarioencuadrosrespiratoriosestécompletamenteaceptado enlacomunidadveterinaria.Desdeelpuntodevistaexperimentaldiferentesestudioshan demostradolacapacidaddeM.hyorhinisparaproducircuadrosdeenfermedadrespiratoriaen lechones(Goišetal.,1968a;Linetal.,2006).Estosestudioshansidocapacesdeevidenciarcómo existeunaaltavariabilidadenlacapacidaddediferentescepasdecampoparaproducir enfermedadclínicaylesionesmicroymacroscópicas,loquepuedeexplicarcómoelpapelde
CapítuloI‐Introducción 4 estemicroorganismomiembrodelaflorabacteriananormalpresenteenelepiteliorespiratorio porcinopuedevariardesdecomensalhastaagenteetiológicoprimario. Apesardeestosdatosexperimentales,nohasidohastahacepoco,cuandoatravésde análisisepidemiológicosbasadosenestudioscomparativosdeanimalesclínicamenteenfermos concuadrosrespiratoriosfrenteaanimalessanos(Palzeretal.,2008)yenelanálisisdemuestras delaparatorespiratorioobtenidasenmatadero(Hansenetal.,2010)cuandosehaempezadoa valorarelpapeldeestemicroorganismoencuadrosdeenfermedadrespiratoriaporcina.Gracias aestosestudiossehaobservadocómoM.hyorhinisjuegaunpapelimportanteencuadrosde enfermedadrespiratoriaporcina,presentandoasociacionespositivasconotrosagentes etiológicospertenecientesalCRPtantoencuadrosdeenfermedadclínicacomoenlesiones pulmonaresobservadasenmatadero,loquedaindiciosdeunapotencialrelaciónsinérgicaentre M.hyorhinisyotrosimportantespatógenosporcinos. Desdeelpuntodevistadiagnóstico,elestudiodelasenfermedadescausadaspor micoplasmasincluyeunagranvariedaddetécnicas,siendoelcultivo,ylastécnicasenfocadasala deteccióndeanticuerposespecíficos,comoelELISAyWesternblottingylosensayosbasadosen lareacciónencadenadelapolimerasa(PCR),losmétodosdeelecciónporexcelencia(Milesy Nicholas,1998).EnloquerespectaaM.hyorhinis,eldiagnósticomolecularsebasaúnicamente enprotocolosdePCRdetipoconvencionalcombinadoscondeteccióndeADNamplificadoen gelesdeagarosa(Caronetal.,2000a)odepoliacrilamidacongradientedeureaenloquese denominaPCR/DGGE(McAuliffeetal.,2005).Estastécnicas,aunqueempleadasdeforma extensivatantodeformaexperimentalcomoeneldiagnósticodemuestrasclínicashastala
CapítuloI‐Introducción 5 fecha,presentanciertasdesventajasencomparaciónconotrastécnicasdedesarrollomás recientes,siendoelprincipalejemplolaPCRcuantitativaatiemporeal(qPCR),lacualpresenta numerosasventajasencomparaciónconlaPCRconvencionalentrelasquedestacanlacapacidad deprocesarnumerosasmuestrasdeformasimultánea,unincrementoensensibilidady especificidad,rapidezycapacidaddecuantificacióndeADNespecíficoenmuestrasclínicasoen cultivos(Higuchietal.,1993). Aligualqueenelcasodeldiagnósticomolecular,yapesardesuimportanterolcomo herramientadiagnósticaaplicadaalestudiodelarespuestainmunedetipohumoralencuadros clínicosdetipoinfeccioso,hastaelmomentonosehadesarrolladoningúntestdediagnóstico serológicoaplicadoalestudiodeanticuerposfrenteaM.hyorhinis.Contrariamente,enloque respectaaotrasenfermedadescausadaspormicoplasmas,tantoenhumanoscomoenotros animales,lastécnicasserológicasrepresentanunaherramientaindispensableenelestudiodela respuestainmune.Diversastécnicasserológicashansidoempleadashastalafechaparael estudiodemicoplasmas,siendolasmáscomuneselELISA(Bruggmannetal.,1977),graciasasu capacidaddeanalizarmúltiplesmuestrasdeformasimultáneayfacilidadderealización,yel Westernblotting,empleadonormalmentecomotécnicaserológicadeconfirmacióndebidoasu mayorsensibilidadyespecificidad(KennyyCartwright,1984;YoungyRoss,1987).Otrastécnicas serológicasqueseempleancomúnmenteenelcampodelamicoplasmologíaincluyenlafijación delcomplementoylaaglutinaciónporlátex(McKeanetal.,1979)entreotras. Unaramadelamicrobiologíaquehademostradounagranutilidadparaelestudiodelas poblacionesbacterianaseslatipificacióngenética.Estavertientedelamicrobiologíatradicional
CapítuloI‐Introducción 12 Figura1.1.Árbolfilogenéticobasadoenlassecuencias del genARNr16Sdemicoplasmas(Brown,2010)
CapítuloI‐Introducción 13 deelongaciónTu(EF‐Tu,tuf)(Kamlaetal.,1996),gencodificanteparalaproteínaftsZ(Kukekova, 1999),secuenciasespaciadorasintergénicas16S‐23S(ISRoITS)(Harasawa,1999;Volokhovetal., 2012),elgencodificanteparalasubunidadβdelaARNpolimerasa(genrpoB)(Kim,2003),y combinacionesdediferentesgenesconservados(Manso‐Silvánetal.,2007). Hastahacepoco,laclasificacióntaxonómicabasadaenelgenARNr16Sincluíaalaclase MollicutesenelphylumFirmicutes(Garrityetal.,2007).Unareclasificaciónrecientedelphylum Firmicutes(DeVosetal.,2009),basadaenmarcadoresfilogenéticosalternativostalescomoel análisisdelgenrpoB,análisisdelachaperoninaGroELyanálisisdesubunidadesdelaATPasaF0F1 (LudwigySchleifer,2005)sitúaalaclaseMollicutesfueradeestephylum,siendolaclasificación actualaceptadaoficialmentelamismapublicadaporMurrayen1984,dondelaclaseMollicutes seencuentraclasificadadentrodelphylumTenericutes(Brown,2010). 1.2.1.2. Estructuracelularycápsula. LaausenciadeparedcelularenlosorganismosdelaclaseMollicutesexplicavariasdesus característicasprincipales.Entreellasseencuentralaresistenciaaantibióticoscuyadianase encuentraenlasíntesisdepeptidoglicano(betalactámicosyglicopéptidos). Lasseccionesultrafinasdemicoplasmasobservadasconmicroscopíaelectrónica generalmentenoproporcionanunagrancantidaddeinformación.Estatécnicapermite identificarlamembranacelularconsuestructurabilaminaryelcitoplama,dondesepueden diferenciarlosribosomasymaterialnucleico.Lastincionesconrojorutenio,quetiñe mucopolisacáridosdeformaespecífica,observadasbajomicroscopíaelectrónica,han
CapítuloI‐Introducción 14 demostradolapresenciadeunamatrizextracelularfibrilaro“cápsula”(WilsonyCollier,1976; MinionyRosenbush,1993).Estacápsulasepresentaenestrecharelaciónconlamembrana celularyhasidodocumentadaenvariasespeciesdelosgénerosMycoplasmayUreaplasma, entrelasqueseencuentranM.mycoidessubesp.mycoidesSmallColony,M.dispar,M. gallisepticum,M.hominis,M.hyopneumoniae,M.meleagridis,M.pneumoniae,M.pulmones,M. synoviae,M.capricolumsubesp.capricolumyUreaplasmaurealyticum(BoatmanyKenny,1971; RobertsonySmook,1976;Rurangirwaetal.,1987). Lafuncióndelacápsulaenmicoplasmasnoestácompletamenteclara(Miniony Rosenbush,1993),aunquesecreequepuededesempeñarunpapelenlapatogenicidaddeestas bacterias,favoreciendolaadhesiónaltejidohospedador(Robb,1984),incrementandosu toxicidadoevadiendolarespuestainmunecelularaldificultaroinhibirlosprocesosde fagocitosis(RosenbuschyMinion,1992,Marshalletal.,1995). 1.2.1.3. Membranacelularyestructuraantigénica. Lamembranacelulardelosmicoplasmas,aligualqueenotrascélulas,esunamembrana permeableselectivaqueenvuelvealcitoplasmayestáformadaporunabicapadefosfolípidos conproteínasdemembranainsertadasenella. Enlosmollicutes,dosterciosdelamembranaplasmáticaestánformadosporproteínas, siendoelterciorestantelípidosdemembrana(Razinetal.,1998).Lamayoríadelasproteínas presentesenlamembranadelosmicoplasmaseencuentranancladasalaparteexternadela membranaplasmática,adiferenciadelasbacteriasGram‐negativas,dondepresentandiferentes
CapítuloI‐Introducción 15 localizacionesdependiendodesufunción.Untipocaracterísticodeestasproteínasdemembrana sonlaslipoproteínas,quealigualqueloslipopolisacáridosenbacteriasGram‐negativas,pueden modificarsusecuencia,incrementandolavariabilidadantigénicadeestosorganismosyjugando unpapelimportanteenlamodulacióndelarespuestainmunedelorganismohospedador (Chambaudetal.,1999). Apesardelagranvariedaddeproteínasdemembrana,solamenteexisten4funciones reconocidas:lipoproteínaconfunciónestructural,proteínasdetransporteABC,funciones enzimáticasycapacidaddeadherencia(SutcliffeyRussell,1995;HayashiyWu,1990). 1.2.1.3.1. Proteínasvariablesdesuperficie(Vsps) Lapresenciaenmicoplasmasdeproteínascapacesdemodificarsuestructuradeforma reversibleyalterardeestaformasucomposiciónantigénicafuedescritaporprimeravezen1990 porRosengartenyWise.Estavariabilidadpermitealosmicoplasmasobtenerunamayor capacidaddecolonizaciónydeadaptaciónalmedioatravésdelavariacióndesuarquitecturade superficiecelular. Apesardelaaltasusceptibilidadteóricaalosanticuerposyalalisismediadaporel complementodebidoalaausenciadeunaparedcelularrígida,losmicoplasmassecaracterizan porcausarnormalmenteinfeccionesdetipocrónico,evidenciandolaincapacidaddelsistema inmuneparaacabarconellos(Cittietal.,1997).Laselecciónconstantedesubpoblaciones celulares,enlugardelaadaptacióndeunapoblacióncompleta,podríaexplicarlanaturaleza crónicadelasinfeccionescausadaspormicoplasmas.Lacapacidaddevariaciónantigénicaparece
CapítuloI‐Introducción 16 estarrelacionadaprincipalmenteconlipoproteínasancladasalasuperficieexternadela membranacelular(Razinetal.,1998). Otrométododemodificarlaantigenicidadylarespuestainmunedehospedadoresel denominadoenmascaramientoantigénico,dondelosmicoplasmassoncapacesderealizar modificacioneseneltamañooenlacomposiciónlipídicadelaslipoproteínasdemembranacon elfindedificultarlaaccesibilidadaciertosantígenosdesuperficie(RosengartenyYogev,1996). Ademásdeestacapacidaddemodificaciónantigénicaalgunosmicoplasmashandemostrado presentarlahabilidaddemodificarsurepertorioantigénicoconelfindeasemejarseal organismohospedador,enloquesehadenominadocomomimetismomolecular(Jacobsetal., 1995). Diferentesproteínasvariablespertenecientesafamiliasdemultigeneshansido identificadasenM.bovis(vsps:familiasdemultigenesdondeunaaltavariacióndefasetiene lugar),enM.gallisepticumeM.imitans(pMGA:variacióneneltamañodelipoproteínasde membrana)(Cittietal.,1999).M.hyorhinispresentaunodelosmecanismosdevariabilidad antigénicamásestudiados.Estesistema,compuestoporsietegenesquecodificanparaelmismo númerodelipoproteínasvariablesdemembrana(vlp),permiteaestemicroorganismoexpresar diferentescombinacionesproteicasenfuncióndelainfluenciadelmedioodelsistemainmune delhospedador(Cittietal.,2000).Estegrupodeproteínas,presentesenlasuperficiecelular,se encuentranreguladas,aligualqueenotrosmicoplasmas,porcambiosensutamaño,y constituyenelcomponenteantigénicoprincipaldeM.hyorhinis(RosengartenyWise,1990).
CapítuloI‐Introducción 17 1.2.1.4. Patogenicidadyfactoresdevirulencia LosorganismospertenecientesalaclaseMollicutessonensugranmayoríabacterias comensales,siendolosaisladosdeartrópodosconsideradosinclusocomomicroorganismos simbiontes(HackettyClark,1989).Encasodelosmicoplasmaspatógenos,lasinfeccionesque éstoscausansuelenserensumayoríadetipocrónico.Apesardelaclaraasociaciónentre micoplasmasyenfermedadenanimales,plantaseinsectosnoexistemuchainformaciónsobre losmecanismosexactosqueinfluyenenlapatogenicidaddeciertosmicoplasma. Entrelosposiblesfactoresdepatogenicidaddescritosseencuentralaproducciónde peróxidodehidrógenoyradicalessuperóxidocomoproductosmetabólicosdedesecho,capaces decausardañooxidativoenlamembranadelascélulasdelhospedador(Almagoretal.,1984, 1985y1986). Existenotrosmecanismosposiblesporlosquelosmicoplasmaspuedencausar enfermedad.Entreellosseencuentralapresenciadeureasas,quepuedendarlugarala produccióndeamoníaco,lapresenciadefosfolipasaA2enUreaplasmas,queinfluenciael metabolismodelaprostaglandina,generandoproblemasdurantelagestación(Razinetal., 1998),lacapacidaddefusionarseparcialmenteconlascélulashospedadoras,incrementadoel dañocausadoporlosradicalessuperóxido(Wangetal.,1993)yporúltimo,elpapelquela cápsulaexternadepolisacáridojuegaenreducirlacapacidaddefagocitosisenelorganismo hospedador,favoreciendoporlotantolacolonizacióndelosmicoplasmas(Marshalletal.,1995).
CapítuloI‐Introducción 18 1.2.2. Micoplasmosisenganadoporcino Losprincipalesmicoplasmasaisladosdelganadoporcinoseencuentranrepresentadosen latabla1.2. Lasmicoplasmosisporcinaspresentanunadistribuciónmundial,afectandoenmayor medidaalossistemasdeproducciónintensivos.Dentrodeestasmicoplasmosisdestacacon diferencialaneumoníaenzoóticaporcina(NEP),causadaprincipalmenteporM.hyopneumoniae, aunquetrabajosrecienteshandemostradoqueM.hyorhinistambiénjuegaunpapelimportante tantoenlaNEPcomoenelcomplejorespiratorioporcino(CRP)(Linetal.,2006;Palzeretal., 2008;Hansenetal.,2010). EspecieFechadeaislamientoPresentaciónclínica M.hyopneumoniaeMareySwitzer,1965Neumoníaenzoóticaporcina(NEP) M.hyorhinisSwitzer,1955Neumonía,artritis,pericarditis,poliserositis, otitismedia, M.hyosynoviaeRossyKarmon,1970Poliartritis M. f locculareMeylingyFriis,1972Apatógeno – nodemostrado M.hyopharyngisEricksoneta l .,1986Apatógeno – nodemostrado M.suisSplitter,1950Anemiainfecciosaporcina Tabla1.2.Principalesmicoplasmasporcinos 1.2.2.1. Mycoplasmahyopneumoniae Aisladoporprimeraporen1965porMaréySwitzer,M.hyopneumoniaeestáconsiderado comounodelosmicoplasmasmásimportantesenelámbitodelasanidadanimal, principalmentedebidoalasimplicacioneseconómicasquelaenfermedadproducidaporeste
CapítuloI‐Introducción 19 microorganismo,laneumoníaenzoóticaporcina,tieneenlossistemasdeproducciónintensiva deporcino(Stärketal.,1992). 1.2.2.1.1. Característicasgenerales LascélulasdeM.hyopneumoniaesecaracterizanporposeerformacoccoideo cocobacilar,nopresentanmotilidadyproducencoloniaspequeñascarentesderegióncentral, normalmenteconvexasygranularesalserobservadasconmagnificación. Presentanuncrecimientolentoalsercultivadosinvitro,pudiendoserutilizadoparaeste findiferentesmediosdecultivo,entrelosqueseencuentranelmediodeFriis,SP4ymedioA26. Lascondicionesóptimasdecultivoseencuentrana37°Cconagitaciónconstante(Brown,2010). DesdeelpuntodevistabioquímicoM.hyopneumoniaesecaracterizaporfermentarla glucosamientrasnoescapazdehidrolizarlaureaolaarginina(Friis,1972;RossyWittlestone, 1983). 1.2.2.1.1.1. Principalesproteínasantigénicasypredominantes Hastalafechasehandescritodiferentesproteínasinmunodominantesinvolucradasenla patogeniadeM.hyopneumoniae. Numerososestudiosdecaracterizaciónproteicayantigénicadetipogeneraldescritos hastalafechahandemostradounagranvariabilidadantigénicaenestabacteria.Dentrodelos principalescomponentesantigénicosdescritosseencuentranlasproteínasdepesomolecular 110,64,50,41y36kDa(YoungyRoss,1987),96,70,46y38kDa(Morietal.,1988),110,78,64,
CapítuloI‐Introducción 20 50,41y36kDa(Strasseretal.,1992),200,114,94,76,43y36kDa(Scarmanetal.,1997)y97, 74,65,46y36kDa(Caronetal.,2000ayb). EnunestudiollevadoacaboencepasdecampodeM.hyopneumoniaeaisladasenGran Canariasedemostróquelasprincipalesproteínaspredominantescorrespondíanaaquellascon unpesomolecularaparentede160,120,97,93,74,65,57,52,46,40y36kDa(Assunção,2003). Deformamásespecífica,WiseyKim(1987ayb)demostraronatravésdelusode anticuerposmonoclonalesqueloscomponentesantigénicosp41,p44,p50yp65eran lipoproteínasespecíficasenM.hyopneumoniae. Lacapacidaddeadhesiónjuegaunpapeldestacadodentrodelosdiferentesfactoresde virulenciapresentesenM.hyopneumoniae(RossyYoung,1993).Estacapacidaddeadhesión juntoconelefectocitopáticoproducidoencélulasdelepiteliociliardelatráqueaseencuentra estrechamenterelacionadoconlapresenciadeunaproteínade97kDadepesomolecular, descritaporprimeravezporYoungycolaboradoresen1992.Estaproteína,denominada comúnmentecomop97,esunaadhesinaqueseencuentralocalizadaenlamembranacelularde M.hyopneumoniaeyesconsideradacomounodelosprincipalesmarcadoresdevirulenciaen estabacteria(Zhangetal.,1995). Elgenquecodificaestaproteínapresentadosregionesrepetitivasbiendiferenciadas, denominadasR1yR2(Hsuetal.,1997).En1998,HsuyMinioncomprobaronquelaregiónR1 jugabaunpapelesencialenelprocesodeadhesión,demostrándoseposteriormentequeera necesariounnúmerosuperiora8repeticionesporregiónR1paraqueseprodujeralaadhesióna
CapítuloI‐Introducción 21 ciliosdetejidorespiratorioporcino(Minionetal.,2000).SehapostuladoquelaregiónR2esuna porciónnoesencialdelaproteínap97,queactúacomoseñueloparaelsistemainmune(Wilton etal.,1998). ApesardeserreconocidacomouncomponenteantigénicoimportanteenM. hyopneumoniae,diferentesestudioshandemostradoquelaactividaddelaproteínap97noesel únicocomponentenecesarioparalaadhesiónaciliosdelepiteliorespiratorioporcino(Chenet al.,1998;HsuyMinion,1998). Aellosesumalarecientedescripcióndevariasproteínasdemembranacapacesdeunirse aciliosyotroscomponentesbiológicosinvitro(Chenetal.,1998;Burnetetal.,2006;Wiltonet al.,2009;Deutscheretal.,2010;Seymouretal.,2010;Bogemaetal.,2011;Seymouretal., 2011),dandomayorpesoalateoríaquedefiendeunprocesodeadherenciareguladopormásde unaproteínademembranaenM.hyoneumoniae. Ademásdeestasadhesinas,existenotroscomponentesproteicosimportantesenM. hyopneumoniaequehansidopartedenúmerososestudiosdecaracterizaciónconelfinde obtenerposiblescandidatosparavacunasrecombinantes(Chenetal.,2008)ocomobasepara técnicasdiagnósticas. Dentrodelosmásimportantesseencuentralap74,caracterizadaporFeldy colaboradoresen1992.Estaproteína,descritaanteriormentecomounaproteínadechoque térmicooheat‐shockprotein(BrookyFaulds,1989),sirviócomobasedeunodelosprincipales
CapítuloI‐Introducción 28 ElmediodeFriis(Friis,1971a)esconsideradocomoelmediodecultivodeelecciónparael aislamientodeM.hyopneumoniae.Setratadeunmediodecultivocomplejoquerequiereuna altaconcentracióndesueroporcinoensucomposición. DentrodelasprincipalesmuestrasrecomendadasparaelaislamientodeM. hyopneumoniaeseencuentranloshisopostraquealesyloslavadostraqueobronquiales(Marois etal.,2007),seguidosportejidopulmonar.Loshisoposnasalesnoserecomiendandebidoal limitadoperiododetiempodentrodelqueM.hyopneumoniaepuededetectarseenlacavidad nasal(Mattssonetal.,1995)yalincrementoenelriesgodecontaminaciónconbacteriasno específicas(Cardonaetal.,2005). ElaislamientodecepasdecampodeM.hyopneumoniaeesunprocesoaltamente laborioso,pudiendoabarcarperiodosdehasta8semanas,complicándosefrecuentementecon otrosmicoplasmasporcinos(Maesetal.,1996). 1.2.2.1.4.2. Diagnósticoserológico EldiagnósticoserológicoenM.hyopneumoniaesebasaenlatécnicadeELISA(enzyme‐ linkedimmunosorbentassay),debidoalarapidezensurealización,asucapacidadparatestarun altonúmerodemuestrasalmismotiempoyasubajocoste. LosprincipalesmétodosdediagnósticoserológicobasadosenlatécnicadeELISAdescritos paraM.hyopneumoniaeincluyenunELISAdebloqueo(bELISA)(Feldetal.,1992)ydostestde ELISAindirectos(iELISA),unocomercializadoporIDEXX(IDEXXM.hyo.AbTest)yelotroun
CapítuloI‐Introducción 29 ensayoampliamenteutilizadobasadoenelusodeantígenospreviamenteprocesadoscon Tween‐20(Nicoletetal.,1980;Kazamaetal.,1989). ElusodeWesternblottingeneldiagnósticodeM.hyopneumoniaeselimitaasuaplicación comotestconfirmatorioparamuestrasdondeelELISApresentaunresultadodudoso(Ameriet al.,2006). Otrastécnicasserológicasincluyenlafijacióndelcomplemento(Morietal.,1983)yla hemoaglutinaciónindirecta(Freemanetal.,1984),aunqueactualmenteseencuentranen desuso. 1.2.2.1.4.3. Valoracióndelesionesmacroscópicasydiagnósticohistopatológico Lavaloracióndelaslesionesmacroscópicasdepulmonesesampliamenteutilizadatanto encontrolesdemataderocomoenlaevaluacióndelaeficaciadeinoculacionesexperimentales, yaque,aunquedecapacidaddiagnósticalimitadasinelapoyodeotrastécnicaslaboratoriales,se consideraunaherramientaesencialparaelestudiodelasinfeccionescausadaspormicoplasmas (Sibilaetal.,2009). Existennumerosossistemasdepuntuacióndelesionesdescritoshastalafecha(tabla1.3). Enlamayoríadeestossistemas,elvalormáximoasignadoacadalóbuloesponderadoenfunción delaprevalenciaenlapresentacióndelesionesasociadasaneumoníaenzoóticaencadaregión pulmonar.
CapítuloI‐Introducción 30 Alahoradeevaluarlaslesionesmacroscópicasenpulmón,hayvariasconsideracionesa tenerencuentaparaunacorrectainterpretacióndelosdatos,yaque,apesardeseraltamente indicativas,laslesionescausadaspormicoplasmasenporcinonosonpatognomónicas,pudiendo serconfundidasporejemploconcasosdeinfluenzaporcina(Thackeretal.,2001),ademásde existirelriesgodequeotraslesiones,comolascausadasporActinobacilluspleuropneumoniae puedanenmascararinfeccionessubyacentescausadaspormicoplasmas. Tabla1.3.Sistemadepuntuacióndelesionesmacroscópicaspulmonaresencerdos,modificadodeSibilaetal.,2009 Elusodetécnicasinmunohistoquímicas(IHQ)paraladeteccióndeM.hyopneumoniaeha sidoempleadoennumerasocasionesparaladeteccióndeantígenosdemicoplasmacomo Autor Unidadde puntuación PuntuaciónporlóbuloTotal ApicalCardíacoDiafragmáticoIntermedio DIDIDI Goodwiny Whittlestone (1973) De0a5ode0a10 puntosporlóbulo 10101010 5(sólo borde craneal) 5(sólo borde craneal) 555 Hannanetal. (1982) De0a5puntospor lóbulo 5/75/75/75/75/195/195/835 Madecand Kobisch (1982) De0a4cuatro puntosporlóbulo dependiendodel porcentajede lóbuloafectado 0puntos=nolesiones;1punto=<25%dellóbulo;2puntos=25–49%;3 puntos=50–74%;4points>75%.Puntosparacadaunodelos7lóbulos 28 Morrisonet al.(1985) Porcentajede lóbuloafectado 10107730306100 Strawetal. (1986) Porcentajede lóbuloafectado 10101010252510100 Christensen etal.(1999) Porcentajede lóbuloafectado 7415935255100
CapítuloI‐Introducción 31 técnicaaccesoriaparalaevaluaciónhistopatológicadelesionespulmonares(Andrada,2001; Sarradelletal.,2003;Opriessnigetal.,2004;Redondoetal.,2009),aunquesuescasa sensibilidadhacequenoseaunatécnicadeelecciónendiagnósticorutinario. Elmétodomásextendidoparalavaloraciónsemicuantitativadelesionesenpreparaciones histológicaseseldescritoporLivingstonycolaboradoresen1972.Enélseestablecencuatro diferentesvalores(+,++,+++,++++)quevaríandependiendodelagradodelaslesiones,taly comoseexponeacontinuación: +:Unoomásnóduloslinfoidesenlasubmucosaperosinpenetrarenlacapamuscularde lamucosa. ++:Unoomásnóduloslinfoidesextendidosatravésdelacapamusculardelamucosa, escasoinfiltradoinflamatorio(principalmenteneutrófilos),tantoanivelseptalcomoenlaluz bronquialyalveolar.Laparedalveolargeneralmentepocoengrosada. +++:Hiperplasialinfoideperivascularyperibronquiolarconnumerosascélulasseptalesy neutrófilosenlaluzalveolar.Enlasáreasafectadaselbronquiocontienegeneralmenteungran númerodeneutrófilosenlaluz. ++++:Hiperplasialinfoideperivascularyperibronquiolarintensaenáreasextensasdel parénquimapulmonar.Elinfiltradoseptalointraluminal(compuestopormacrófagosy neutrófilos)esescasoysepuedeencontraredemaalveolarenlasáreasafectadas.
CapítuloI‐Introducción 32 Lahibridacióninsitu(HIS)suponeunaalternativaalaIHQ,yaqueelusodesondas sintetizadascomercialmentemarcadascondigoxigenina,fluoresceínauotrosmarcadores, reducelavariabilidadbiológicaobservadaentrediferentesanticuerpos,mejorandola repetitividaddelatécnica(LinyLloyd,1991).LaHISsehausadoconéxitoparaladetecciónde ADNespecíficodeM.hyopneumoniaetantoenanimalesinfectadosexperimentalmentecomo muestrasprocedentesdeinoculacionesexperimentales(KwonyChae,1999;Boyeetal.,2001; Kwonetal.,2002). 1.2.2.1.4.4. Diagnósticobasadoenlareacciónencadenadelapolimerasa(PCR) Existennumerosastécnicasbasadasenlareacciónencadenadelapolimerasadescritas hastalafechaparaladeteccióndeM.hyopneumoniae. Loslímitesdedeteccióndelosdiferentesprotocolosdesarrolladoshastalafechavarían entre5nanogramos(Harasawaetal.,1991)hasta0,5ficogramos(Kurthetal.,2002)deADN genómico. DentrolosprincipalesgenesevaluadosparaeldiseñodetécnicasdePCRparaladetección deM.hyopneumoniaecabedestacarelgendelARNribosómico16S(Stemkeetal.1994, Mattssonetal.,1995;Calsamigliaetal.,1999a;Stakenborgetal.,2006;Caietal.,2007).Otros genesincluyentransportadoresABCputativos(Verdinetal.,2000;Dubossonetal.,2004)yvarias proteínasespecíficas(Artiushinetal.,1993;Caronetal.,2000;Kurthetal.,2002yMaroisetal., 2010).AlahoradedetectarM.hyopneumoniaeutilizandoPCR,lasmuestrasrecomendadas
CapítuloI‐Introducción 33 incluyenhisopostraqueobronquiales,lavadosbronquialveolaresytejidopulmonar(Kurthetal., 2002;Maroisetal.,2007). 1.2.2.1.5. Profilaxis,controlyerradicación Porlogeneral,lasmedidasdeprofilaxisycontroldelaNEPsesostienensobretrespilares básicos:optimizacióndesistemasdemanejoyproducción,usodeantibióticosyvacunación. Dentrodelasprincipalespautasdemanejoenfocadasalcontrolyprofilaxisdeesta enfermedadcabedestacarelsistemadeproducción“tododentro‐todofuera”(TD‐TF),yaque permitereducirengranmedidaelcontactoentreanimalesmásviejosconanimalesjóvenes,más susceptiblesalaenfermedad(Clarketal.,1991).Deformaadicional,sehademostradoqueeste sistemafavorecelareduccióndelesionespulmonaresyayudaamejorarlosíndicesde producción,porloqueserecomiendasuempleoenlossistemasdeproducciónporcina. Elusodeantibióticoscomométododecontrolyprofilaxisestáaltamenteextendidoenla producciónporcinaindustrial.Lapautademedicaciónmásutilizadaincluyeelusodepiensos medicadosdeunaatressemanas,empezandounasemanaantesdelcomienzodelaenfermedad (Thackeretal.,2004).EstesistemareducenotablementeelnúmerodecélulasdeM. hyopneumoniaepresentes,peronolograevitarporcompletolainvasiónporpartedeeste agentebacteriano.Otrosistemaempleadodeformarutinariaeslamedicaciónpulsada, administradadeformaintermitenteduranteperiodosdeespecialriesgodeenfermedad(Le GrandyKobisch,1996).Laprincipalcontrapartidadeestemétodoradicaenlaposibilidadde
CapítuloI‐Introducción 34 desarrolloderesistenciaaagentesantimicrobianoscuandoseusadeformaprolongada(Maeset al.,2008). Actualmente,lamayoríadelospaísesconsistemasdeproducciónintensivosdeporcino incluyenpautasdevacunaciónfrenteaM.hyopneumoniae.Comoindicadordeestedato,cabe destacarquelavacunafrenteaM.hyopneumoniaeesunadelasdosvacunasmásvendidasenel mercadodelasanidadanimalanivelglobal(Meeusenetal.,2007). TodaslasvacunascomercialesfrenteaNEPsebasanenbacterinasinactivadas químicamenteencombinacióncondiferentesadyuvantes.Aunquelasvacunascomercializadas hastalafechanodanlugaraunaproteccióncompletaynoevitanlacolonizacióndeM. hyopneumoniae(Thackeretal.,1998),sehademostradoquesuusoayudaamejorarelíndicede gananciadepesodiarioyelíndicedeconversión,ademásdereducirlamortalidad,eltiempoen alcanzarelpesodematadero,laslesionespulmonaresysignosclínicos(Maesetal.,1998;Maes etal.,1999). VariospaísesdelaUniónEuropeasiguenactualmenteprogramasdestinadosala erradicacióndeM.hyopneumoniaedesusgranjas(Baekboetal.,1994;Rautiainenetal.,2001; Stärketal.,2004).Lamayoríadelosprogramasdeerradicaciónpropuestoshastalafecha incluyenprocesosdedespoblacióncompleta,odespoblaciónparcialencombinacióncondietas medicadasbasadasenelusodetiamulina,ocombinacionesdeclortetraciclina,tilosinay sulfadimidina(Zimmermanetal.,1989).Variacionesdeesteprogramadedespoblación,utilizado principalmenteengrandesexplotacionesdeEstadosUnidosyCanada,incluyenademáselusode vacunasyelllamadodestetetempranomedicado(DTM),dondelosanimalessondestetadosa
CapítuloI‐Introducción 35 loscincodíasdeedadyaisladosmientrasrecibentratamientoantimicrobianodurantediezdías (HarrisyAlexander,1999).ElDTMtambiénincluyelaadministraciónintensivade antimicrobianosalasmadrestantoenelúltimoperíododelagestacióncomoaliniciodela lactación. 1.2.2.2. Mycoplasmahyorhinis 1.2.2.2.1. Característicasgenerales LaprimeradescripcióndeM.hyorhinisdatade1955,cuandoSwitzer,comopartedeun estudioparadeterminarlascausasderinitisatróficainfecciosa,aislódelacavidadnasalde cerdosloquedenominópleuropneumonia‐likemicroorganismomicroorganismosimilaral causantedepleuroneumonía(PPLO).M.hyorhinisestáconsideradocomounabacteria contaminanteaisladafrecuentementedeltractorespiratoriodecerdo.Seconsideranlas superficiesmucosasdeltractorespiratoriosuperiordelcerdoylastonsilascomoelhábitat naturalparaestemicroorganismo(FriisyFeenstra,1994).Presentaunadistribuciónmundial, encontrándosenormalmenteasociadoconcasosdepoliartritis,pericarditisypoliserositisen cerdosjóvenes(KobischyFriis,1996).Ademássehademostradosuasociaciónconcasosdeotitis media(Moritaetal.,1995)yneumonía(Linetal.,2006). AligualquetodoslasbacteriasdelgéneroMycoplasma,M.hyorhinispresentauntamaño degenomarelativamentepequeño,variandoentre829y839kb(Liuetal.,2010;Kornspanetal., 2011),conuncontenidoenG+Cde25.9%.
CapítuloI‐Introducción 36 Desdeelpuntodevistafilogenético,M.hyorhinispresentabastantessimilitudesconotros dosmicoplasmasporcinos,M.hyopneumoniaeyM.flocculare,agrupándoseconjuntamenteenel clusterneurolyticumenanálisisbasadosenelgenARNr16S,genrpoBeITS16S‐23S(Volokhovet al.,2012). BioquímicamenteM.hyorhinisfermentalaglucosa,noutilizaargininaynohidrolizala urea,reducetetrazolio,tantodeformaaeróbicacomoanaeróbica,esfosfatasapositivoy negativoenlapruebadedigestióndelacaseína(Friis,1971b). EncomparaciónconM.hyopneumoniae,M.hyorhinisesrelativamentefácildeaislar, siendoconsideradocomounmicoplasmadecrecimientorápido(Friis,1971b).Enmediosólidose puedenobservarcoloniastípicasdemicoplasmaconmorfologíade“huevofrito”trasincubación a37°Centre2a5días,conundiámetrofinalde0.5a1mm. 1.2.2.2.1.1. Mecanismosdevariaciónantigénica ElsistemavlprepresentaelprincipalmecanismodevariaciónantigénicaenM.hyorhinis. Estesistemaproporcionalacapacidadalmicroorganismodemodificarsurepertorioantigénicoy característicasestructuralesdesuperficieconelfindeevadirlaaccióndelsistemainmunedel organismohospedador(Cittietal.,1997). Hastalafechasehaencontradountotaldehastasietegenesinvolucradosenelsistema vlp:vlpA,vlpB,vlpC,vlpD,vlpE,vlpFyvlpG(Cittietal.,2000).Solamentesepresentaunacopia decadagen,siemprelocalizadosconjuntamente.Deformageneralsepresentanagrupadosenel genomadeM.hyorhinisencombinaciónconlasecuenciadeinserciónIS1221,untransposóno
CapítuloI‐Introducción 37 elementogenéticotransponibleconvariascopiasdispersasenelgenomayresponsablede reordenamientosgenómicosagranescala,incluyendodeleciones,insercioneseinversiones génicas(ZhengyMcintosh,1995). Elsistemavlpestáreguladomediantediferentesmecanismos: ‐ SistemaON/OFFodeencendidoyapagado:Sistemaquemediantedelecioneso insercionesenlaregiónpromotoraregulalaexpresióndelosgenesvlp(RosengartenyWise, 1990;CittiyWise,1995). ‐ Variaciónentamaño:Basadoenladeleciónoinsercióndesecuenciasintragénicas repetitivas,dandolugarenconsecuenciaavariaciónantigénica(Yogevetal.,1991;Cittietal., 1997). ‐ Variaciónenelnúmerodegenespresentesencadacepa,variandoporlotantoel númerodevlpsexpresadosenlamembranadelmicroorganismo(Yogevetal.,1995;Cittietal., 2000). Graciasaestosmecanismos,M.hyorhinisescapazdevariarrápidamente,adaptándosea diferentescondicionesdelmediouhospedadorydandolugaralaseleccióndepoblaciones resistentesalarespuestahumoral(Rosengartenetal.,2000). 1.2.2.2.2. Epidemiología M.hyorhinispresentaunadistribuciónmundial,encontrándoseencualquierlugardonde hayaproducciónintensivaporcina(Schulmanetal.,1970).
CapítuloI‐Introducción 44 2‐5díasdeincubación.Elcultivoesunatécnicadiagnósticaconunaaltaespecificidadperobaja sensibilidad. 1.2.2.2.4.2. Diagnósticoserológico Dentrodelosensayosdediagnósticoserológicoempleadoshastalafecha,lainhibición delcrecimientoyeltestdelainhibicióndelmetabolismorepresentanlastécnicasmásutilizadas (Goiš,1968b;Tayloretal.,1971).Otrotest,comolaaglutinaciónporlátex,desarrolladaporGoiš ycolaboradores(1972),fuecapazdedetectarseroconversiónfrenteaM.hyorhinistras14DPI. Lahemoaglutinaciónindirectatambiénhasidoutilizadaconéxito,siendocapazdedetectar anticuerposespecíficoshasta42DPI(Kobisch,1983).Hastalafechanosehadescritoningúntest serológicobasadoenWesternblottingoELISA. 1.2.2.2.4.3. DiagnósticoporPCR Hastalafechasehandescritonumerososensayosbasadosenlareacciónencadenadela polimerasa(PCR)paraladeteccióndeM.hyorhinis,destacandolassecuenciasdeADN específicasdelgenARNr16Scomoobjetivomayoritarioenestosensayos(Stemkeetal.,1994, Kobayashietal.,1996a). Caronycolaboradores(2000)desarrollaronunaPCRespecíficabasadaenladeteccióndel gencodificanteparalaproteínap37deM.hyorhinis,aunqueaparentementeesmenossensible queelcultivo.
CapítuloI‐Introducción 45 ElusodelgenARNr16Scomodianatambiénhasidoevaluadoparaladetecciónmúltiple deM.hyorhinisjuntoaotrosmicoplasmasporcinos,incluyendoM.hyopneumoniae(Linetal., 2006)yM.hyopneumoniaeyM.flocculare(Stakenborgetal.,2006).Otratécnicautilizada ampliamenteeslaPCRmúltipledesarrolladaporTangycolaboradores(2000).Estatécnica,que empleadosoligonucleótidosuniversalesparalasecuenciaespaciadoraintergénica16S‐23Sde bacteriasdelgéneroMycoplasmasyAcholeplasma,escapazdediferenciarlosprincipales micoplasmasporcinosasociadosacuadrosdeinfecciónrespiratoriaydeartritis(M.hyorhinis,M. hyopneumoniae,M.hyosynoviae,M.flocculare,Mhyopharyngis),habiendosidousadaconéxito enestudiosepidemiológicosdeprevalenciademicoplasmasrespiratoriosporcinos(Nathueset al.,2011). RecientementesehadesarrolladounaPCRmúltiplecapazdedetectardeforma simultáneaochopatógenosrespiratoriosporcinosdiferentesincluyendoM.hyopneumoniae,M. hyorhinisademásdecircovirusporcinotipo2,citomegalovirusporcino,coronavirusrespiratorio porcino,SIVyelgenotipoEuropeoyNorteamericanodelPRRSv(HarderyHuebert,2004),cuyo usohaconfirmadoserdeexcelenteayudaendiferentesestudiosepidemiológicos(Palzeretal., 2008;Hansenetal.,2010). Latécnicadeelectroforesisengeldesnaturalizanteengradiente(DGGE)representaun granavanceeneldiagnósticodeenfermedadescausadaspormicoplasmas.Estatécnicapermite ladiferenciacióndeproductosespecíficosobtenidosporPCRtraslaamplificacióndelgenARNr 16S,medianteelusodeoligonucleótidosparaladetecciónuniversaldebacterias(McAuliffeet al.,2003)oparaladetecciónespecíficademollicutes(McAuliffeetal.,2005),encombinación
CapítuloI‐Introducción 46 conelectroforesisdelproductoamplificadoengelesdepoliacrilamidaconungradientedeurea. DGGEpermiteevaluarenunamismareacciónlapresenciadecultivosmixtos,tantocon diferentesmicoplasmascomoconotrosagentesbacterianos. 1.2.2.2.4.4. Diagnósticoportécnicasinmunohistoquímicas,inmunofluorescencia indirectaehibridacióninsitu. EldiagnósticoporIHQeinmunofluorescenciaindirectahasidoempleadoconéxitoparala deteccióndeM.hyorhinisendiferentesinoculacionesexperimentales,tantoenelepitelio auditivo(Moritaetal.,1995;Moritaetal.,1998)comoentejidopulmonar(Goišetal.,1971; Kinneetal.,1991;Kawashimaetal.,1996).Lastécnicasdescritashastalafechausananticuerpos policlonalesobtenidosenconejosparaladeteccióndeM.hyorhinisloquehaceque,debidoala cantidaddecomponentesantigénicoscompartidosentremicoplasmas,suusonosea recomendadohastalaaparicióndeanticuerposmonoclonalesespecíficos. Comoalternativa,HISrepresentaunaopciónespecífica,sensibleydebajocosteparala deteccióndeADNdeM.hyorhinisenseccionesdetejidofijadosconformalina,tantodeorigen respiratorio(Boyeetal.,2001)comoenmuestrasprocedentesdecuadrosdepoliserositisy pericarditis(Kimetal.,2010). 1.2.2.2.5. Profilaxisycontrol ElrangodeantibióticosempleadosparatratarlasinfeccionescausadasporM.hyorhinis essimilaraaquellosqueseutilizanparaelcontroldeM.hyopneumoniae,aunqueexisten
CapítuloI‐Introducción 47 indiciosquedemuestranqueenalgunoscasos,eltratamientodeanimalesclínicamente enfermospuedenoresultardeltodosatisfactorio(Ross,1999). Variosestudiosinvitrohandemostradolaefectividaddeunampliorangodeantibióticos frenteaM.hyorhinis,demostrándoseunpatróndeconcentracionesmínimasinhibitoriascomún enaisladoscondiversoorigengeográficoytemporal(Williams,1978;Hannanetal.,1997;Wuet al.,2000). Losmacrólidostilosina,tilvalosina,josamicina,lincomicinaytiamulinapresentanbajas concentracionesinhibitoriasfrenteaM.hyorhinis(Aarestrupetal.,1998;Makhanonetal.,2008), perosuutilizacióndebeserevaluadadetenidamentedebidoalaaparicióndecepasresistentes, asociadasamutacionesenlosdominiosIIyVdelARNribosómico23S(Kobayashietal.,2005). Lastetraciclinasyfluoroquinolonaspresentannivelesdeinhibiciónmedio‐alto,ademásde ungrandevariabilidadenlosvaloresentrediferentesaislados(Wuetal.,2000).Variosautores handemostradoeldesarrollodemutacionescodificantesparaeldesarrolloderesistenciasfrente atetraciclinasyfluoroquinolonas(Dégrangeetal.,2008;Viccaetal.,2007)enmicoplasmas,lo quesugiereunaposibleasociaciónentreladisminucióndelassensibilidadaestosagentes antimicrobianosenM.hyorhinis,observadaalcomparardatoshistóricos(Kobayashietal., 1996b;Kobayishietal.,2005)yeldesarrolloderesistencias. Lavalnemulinaylatiamulina,agentesantimicrobianospertenecientesalgrupodelas pleuromutilinas,poseenunaaltacapacidaddeinhibicióninvitrofrenteaM.hyorhinis (Makhanonetal.,2008).Actualmentesonampliamenteutilizadasenproducciónporcinasinque
CapítuloI‐Introducción 48 sehayademostradounadisminucióndelasensibilidadenmicoplasmasfrenteaestos antibióticos(Thongkamkoonetal.,2010)porloquejuntoconlatilosinaytilmicosina,ademásde otrosmacrólidosdenuevageneracióncomolatulatromicina(Nutschetal.,2005;Godinho,2008) constituyenlosantibióticosdeelecciónparaeltratamientodelainfeccióncausadaporM. hyorhinisencerdos. NoexistenprogramasdeprevenciónycontrolfrenteaM.hyorhinisdescritoshastala fecha.Elavancedelainvestigaciónenelcampodeldesarrollovacunalesescaso,aunqueseha demostradoqueelusodevacunasinactivadasencombinaciónconadyuvantesoleosos administradasporvíaintramuscularpuedenproporcionarprotecciónencerdosinfectados experimentalmenteconM.hyorhinis(Leeetal.,2010).Tambiéncabedestacarlapresenciade unapatentequedescribelaproduccióndeunavacunacombinadaconM.hyorhinisyM. hyopneumoniae(UnitedStatesPatentandTrademarkOfficehttp://patft.uspto.gov,USPatent 7381414),enlaqueseconfirmalaproteccióndeanimalesvacunadostrasinfecciónconunoo ambospatógenosdeformasimultánea,sinquehastalafechaexistaningunapublicación científicarevisadaporparespublicadahastalafechaconfirmandoestosdatos. 1.2.2.3. Mycoplasmahyosynoviae RossyKarmon(1970a)realizaronlaprimeradescripcióndeestaespecie,asociándolaa cuadrosdeartritisencerdosdetresaseismesesdeedad. Enmediosólido,M.hyosynoviaedalugaracoloniastípicasenformade“huevofrito”, normalmenteasociadasalaproducciónde“películasycristales”.Bioquímicamentesecaracteriza
CapítuloI‐Introducción 49 pormetabolizarargininaysernegativoparalaspruebasdemetabolizacióndelaurea, fermentacióndelaglucosayreduccióndeltetrazolio.Esunmicoplasmadecrecimientorápido, especialmenteenmediosdecultivoenriquecidosconmucinaporcina(Friisetal.,1991;Kobischy Friis,1996).ElhábitatprincipaldeM.hyosynoviaeseencuentraenelaparatorespiratorio superiordelcerdo,principalmenteeneláreadelatonsilapalatina(RossySpear,1973).Apartir deestalocalización,ydeformahematógena,elorganismoescapazdealcanzarlasmembranas serosas,conunaespecialpredilecciónporlasmembranassinoviales(Hagedorn‐Olsenetal., 1999a),aunqueotrasmembranasserosas,comoporejemplolamembranapericárdica,pueden verseafectadas(Jensenetal.,1995;Buttenschønetal.,1997). Clínicamente,lainfeccióncausadaporM.hyosynoviaesecaracterizaporlaproducciónde artritisnopurulentaasociadaacojerademoderaasevera.Lasusceptibilidadalaenfermedadse localizaentrelas10y20semanasdeedad,siendorarasupresentaciónenanimalesadultos(Ross ySpear,1973;KobischyFriis,1996).Lossignosclínicosmásclarosincluyenladificultadde movimientoyanimalesquepermanecenrecostadosoenposicióndeperrosentado, mostrándosereaciosalmovimiento(RossyDuncan,1970b).Normalmentenosepresenta aumentodelatemperaturanidisminucióndelapetito.Loscasosdeartritisproducidosporeste microorganismoraravezdesembocanenunapresentaciónclínicacrónica,observándoseuna recuperaciónentreunaydossemanastraseliniciodelacojera(Hagedorn‐Olsenetal.,1999b). Dentrodelosfactorespredisponentesparalapresentacióndelaenfermedadcabedestacar factoresambientales,comoeltipodesuelo(Ross,1973)ylamezcladeanimalesdediferentes edadesyorigen(Blowey,1993).
CapítuloI‐Introducción 50 Hastalafechasehanempleadodiferentestécnicasdiagnósticasparaladetecciónde anticuerposfrenteaM.hyosynoviae,aunquesólolafijacióndelcomplemento(Blowey,1993)y latécnicadeELISA(Nielsenetal.,2005)hansidoutilizadasparaladetecciónsistemáticade anticuerposenmuestrasclínicas.EldiagnósticoporPCResmuylimitado,basándose principalmenteentécnicasdestinadasaladeteccióndelgenARNr16S(Arhensetal.,1996)o másrecientementeencombinaciónconlatécnicadeDGGE(McAuliffeetal.,2005).Además,la técnicadeHIShademostradoserdeutilidadparaladetecciónespecíficadeM.hyosynoviaeen tejidoporcino(Boyeetal.,2001). Lasmedidasdecontrolyprofilaxissebasanúnicamenteenmedidasdemanejoysobre todoenelusodeantibióticos.ElusodevacunasfrenteaM.hyosynoviaeeslimitadoaunquese hademostrandounaciertacapacidaddeprotecciónalusarformulacionesbasadasenla tecnologíadeISCOM(Lauritsenetal.,2010).Actualmentenoexistenvacunascomercialesfrente aestemicroorganismo.Enloquerespectaalasmedidasdemanejo,NielsenyBusch(1998) evaluaronelusodelsistemaTD‐TF,sinconseguirladesaparicióndelmicroorganismo. DiferentesagentesantimicrobianoshandemostradoserefectivosfrenteaM.hyosynoviae invitro,entrelosquedestacanlalincomicina,tiamulinaylaenrofloxacina(Schultzetal.,2012).A pesardesuacciónfrenteamicoplasmasporcinos,elusodelatilosinaparaeltratamientode infeccionesfrenteaM.hyosynoviaeestádesaconsejadodebidoalaapariciónderesistenciasen diferentescepasdecampo(AarestrupyFriis,1998).
CapítuloI‐Introducción 51 1.2.2.4. Mycoplasmasuis M.suisesunmicoplasmahemotrópicoqueafectaacerdosproduciendoanemia hemolíticaimmunomediada(Messick,2004).Descritoinicialmenteen1950porSplittercomo Eperythrozoonsuis,hasidorecientementeincluidoenelgéneroMycoplasmadebidoasu relaciónfilogenéticaconestosmicroorganismos(Neimarketal.,2001y2002) Desdeelpuntodevistamorfológico,M.suisesunmicroorganismodecarácter pleomórfico,deunos0.40a0.6µmdediámetro,quesesuelepresentarenformadecocos, bacillosoanillos,tantolibresenelplasma(ZacharyySmith,1985),comoenhendiduras formadasenlasuperficiedeglóbulosrojos(PospischilyHoffmann,1982). Latransmisiónnaturalocurreprincipalmentedebidoaaccionesmecánicas(agujaso materialquirúrgico)(Henry,1979).Tambiénexistenevidenciasquesugierenelpapeldealgunos artrópodosenlatransmisióndeM.suis,sinquehastalafechasehayapodidodemostrar definitivamentesupapelenlaepidemiologíadeestaenfermedad(Heinritzi,1990;Messick, 2004).Deformaexperimental,M.suisescapazdeinducirpresentacionclínicatrasinoculación porviasubcutánea,intravenosa,intraperitonealyoral(Hoelzle,2006). LasinfeccionesporM.suispresentanunclínicavariable.Laanemiahemolíticarepresenta elprincipalsignoclinicoencuadrosagudos,llegandoaserletalenalgunoscasos(Messick,2004). Otrossignosclínicosincluyenhipoglucemia,disnea,fiebre,cianosis,ictericia,necrosisdel extremoapicaldelasorejasydisminucióndelagananciadepeso(Heinritzi,1990).En
CapítuloI‐Introducción 52 presentacionescrónicaslosprincipalessignosclínicosdescritossonanemia,retrasoenel crecimientoydisminucióndelosíndicesreproductivos(Henry,1979;Zinnetal.,1983). Aunqueelusodefrotisdirectoapartirdemuestrasdesangrehademostradoserdegran utilidadparaeldiagnósticodeM.suis,suslimitacionesencuestióndesensibilidady especificidad,juntoconeldesarrollodetécnicasmolecularesmásrobustas,hanposicionadoal diagnósticoporPCRcomolatécnicadeelecciónparaladeteccióndeM.suisapartirtantode muestrasdesangrecomodetejidos(Hoelzleetal.,2007a). LosprimerosprotocolosdePCRutilizadosparaladeteccióndeM.suissebasaneneluso deensayosconvencionales(Gwaltneyetal.,1993;Messicketal.,1999;Hoelzleetal.,2003), aunqueactualmente,debidoeldesarrollodelaPCRatiemporeal,hacequeestaúltimaseala técnicadeelecciónparaladeteccióndeADNespecíficodeM.suis.Estudiosrecienteshan demostradoquelosensayosbasadosenPCRatiemporealsoncapacesdeproporcionaruna sensibilidadcienvecesmayoralaobtenidaconPCRconvencionalenladeteccióndeM.suisa partirdemuestrasdesangre(Guimaraesetal.,2011). EldiagnósticoserológicosebasaprincipalmenteenelusodetécnicasdeELISAyWestern blotting.ElusodetécnicasdeiELISAconantígenocompletohademostradoserdeutilidadpara ladeteccióndeanticuerposespecíficosfrenteaM.suis(Hsuetal.,1992),aunqueestudios recienteshanconfirmadocómoensayosbasadosenelusodeproteínasrecombinantes,entrelas queseincluyenunaproteínadechoquetérmico(HspA1),unaadhesinalocalizadaenla membranacelular(MSG1)yelgencodificanteparapirofosfatasainorgánica(ppi),proporcionan
CapítuloI‐Introducción 53 unamayorsensibilidadyespecificidadalcompararlostantofrentealiELISAdeantígeno completocomoatécnicasdehemoaglutinaciónindirecta(Hoelzleetal.,2007b;Liuetal.,2011). EltratamientodeelecciónparainfeccionesporM.suissebasaenelusodetetraciclinas (Hoelzle,2008),aunqueexisteevidenciaquecorroboraque,aunsiendocapacesdecontrolarla enfermedad,notienenelpoderdeeliminaralmicroorganismo,dandoporlotantolugara animalesinfectadosdeformapersistente,loscualesjueganunpapelimportantísimoenel mantenimientoytransmisióndelaenfermedad(Greshametal.,1994). 1.2.2.5. Mycoplasmaflocculare M.flocculareseencuentracomúnmentelocalizadoenelaparatorespiratoriosuperiordel cerdo.Poseeunadistribuciónmundialyhastalafechanosehademostradosucapacidad patogénica,porloquesuimportanciaselimitaúnicamentealasimilitudquepresentaconM. hyopneumoniae(KobischyFriis,1996). Estemicroorganismo,descritoporprimeravezporMeylingyFriis(1972),tomasunombre delcaracterísticocrecimientomicelarqueproduceenmediolíquido,dandolugaralaformación depequeñaspartículasoflóculos,quepuedenobservarseasimplevistaomásendetalle empleandomicroscopíaelectrónicaydecontrastedefase(Hovind‐HougenyFriis,1991). Ademásdelospulmones,lacavidadnasal(KobischyFriis,1996)yelsacoconjuntival (Friis,1970)representanlosprincipalesórganosdianadeM.flocculare.
CapítuloI‐Introducción 60 MétodosbasadosenelanálisisdeltamañodelasbandasdeADN.Estacategoría presentaasuvezdossubdivisiones: ‐ Análisisdebandasobtenidastrasdigestiónenzimática. ‐ AnálisisdebandasobtenidastrasamplificacióndelADN. MétodosbasadosenelanálisisdesecuenciasdeADN. Métodosbasadosenlahibridacióndesondasdeoligonucleótidosmarcadas. 1.2.3.2.1. MétodosbasadoseneltamañodelasbandasdeADNobtenidastrasdigestión enzimáticaoamplificación. Enestacategoríaseincluyelagranmayoríadelastécnicasdetipificaciónempleadashasta lafechaenelestudiodemicoplasmas,debidoprincipalmenteasufacilidadderealización,coste yreproducibilidadenlamayoríadeloscasos. ElanálisisdebandasdeADNrepresentaunaformasencilladeotorgarunperfilúnicoaun microorganismo. GraciasalagrandisponibilidadybajocostedelatécnicadePCR,losmétodosbasadosen estesistemapresentanunagranaceptación,siendolatécnicadeamplificaciónaleatoriadeADN polimórficooRAPD(Williamsetal.,1990)yelanálisisderepeticionesentándemdenúmero variableoVNTR(VanBelkumetal.,1997)losejemplosmásdestacados.
CapítuloI‐Introducción 61 Lasenzimasderestricciónsonendonucleasasaisladasdebacteriasyarqueobacterias capacesdeescindirfragmentosdeADNtrasreconocercombinacionesdenucleótidosespecíficas denominadossitiosderestricción(SmithyWilcox,1970,Roberts,2005).Aligualqueenelcaso delaPCR,estasenzimaspresentanunbajocosteyampliadisponibilidad. Entipificaciónbacteriana,estasenzimassehanutilizadoendiferentessistemas,tantopor sísolas,comoenelcasodelaelectroforesisengeldecampopulsadooPFGE(SchwartzyCantor, 1984)oenprocesosderestriccióncombinadosconlatécnicadePCR,comoenelcasodeel análisisdepolimorfismosenlalongituddefragmentosamplificadosdeADNoAFLP(Vosetal., 1995)yanálisisdepolimorfismosenlalongituddelosfragmentosderestricciónoRFLP(Frostet al.,1991;Linetal.,1991;Cousin‐Alleryetal.,2000;Dorigo‐Zetsmaetal.,2000). 1.2.3.2.1.1. MétodosbasadosenelanálisisdebandasobtenidasporlatécnicadelaPCR. 1.2.3.2.1.1.1. AmplificaciónaleatoriadeADNpolimórfico. Estatécnica,abreviadacomúnmentecomoRAPD(delinglésrandomamplified polymorphicDNA)oAP‐PCR(arbitrarilyprimedPCR),fuedescritaporprimeravezporWilliamsy colaboradores(1990)conelfindecaracterizarADNdeplantasyhumanos,siendo posteriormenteWelshyMcClellanden1990losquedemostraronporprimeravezsupotencial paralatipificacióndemicroorganismosaplicándolaalestudiodecepasdeestafilococosy estreptococos. LatécnicadeRAPDsebasaenelusodeunsolooligonucleótidooprimernoespecíficoy relativamentecorto(sobre10bases)queescapazdeunirsedeformaaleatoriaalADNsujetode
CapítuloI‐Introducción 62 estudio,elcualesposteriormenteamplificadoporPCR.Conelfindemejorarlacapacidadde unióndelprimeralADNmoldeseempleaunavariacióndelaPCRdenominadaPCRdebaja astringencia,enlaqueseusantemperaturasdealineaciónoannealingmásbajasdelonormal conelfindepotenciarlauniónalazardeloligonucleótidoalADNmolde.Estacaracterística permiteelusodeoligonucleótidosnoespecíficosquepuedenhibridarconvariasregionesdel ADNdianadandolugaraproductosdePCRdediferentestamañosdeformasencillayenunsolo paso. Esunatécnicarápidaysencillaquerequierepocoequipamientoyningúnanálisiso conocimientopreviodelassecuenciasdeADNaestudiar.Comocontrapartida,debidoalas característicasintrínsecasasociadasaestatécnica,presentaunabajareproducibilidadentre laboratoriosporloquesuusocomotécnicadetipificacióndereferenciaquedadescartada (Penneretal.,1993). Enloquerespectaasuusoenelestudiodemicoplasmasestatécnicahagozadodeuna ampliadifusiónhabiéndoseaplicadoconéxitoenelestudiodeM.hyopneumoniae(Artiushiny Minion,1996;Nathuesetal.,2011),M.bovis(Butleretal.,2001;McAuliffeetal.,2004;Pinhoet al.,2012),M.ovipneumoniae(Parhametal.,2006),M.cynos(Manneringetal.,2009),siendosu usoenelanálisisdecepasdemicoplasmasdeorigenaviardondeestatécnicahagozadodel mayoréxito,evidenciandounagranheterogeneidadenteaisladosyademásdedemostraruna posibletransmisiónhorizontalendeterminadoscasosdebrotesdeenfermedadenaves(Geary etal.,1994;Fanetal.,1995;Leyetal.,1997;Charltonetal.,1999;Pillaietal.,2003).
CapítuloI‐Introducción 63 Ademásdeenestudiosdeepidemiologíamolecular,RAPDtambiénhasidoempleada comounaherramientaindicativadelavirulenciadecepasdeM.hyopneumoniae, demostrándoselaasociaciónentrelapresenciadeunabandade5000paresbasesdepeso molecularycepasdemoderadaaaltavirulencia(Viccaetal.,2003). 1.2.3.2.1.1.2. Análisisderepeticionesentándemdenúmerovariable. Latécnicadeanálisisderepeticionesentándemdenúmerovariable,tambiénconocida comoVNTR(variablenumbertandemrepeat)oMLVA(multi‐locustandemrepeatanalysis) representaunadelastécnicasdetipificaciónbacterianamásextendidasanivelactual.Descrita inicialmenteporVanBelkumycolaboradores(1997ay1997b),hasidoaplicadaparala caracterizacióndemultituddeespeciesbacterianasdegranimportanciadesdeelpuntodevista veterinarioydelasaludpública,entrelosqueseencuentranStaphylococcusaureus(Sabatetal., 2003),Bacillusanthracis(Keimetal.,2000)yMycobacteriumtuberculosis,considerándose actualmentecomolatécnicadetipificacióndereferenciaglobalparaesteúltimomicroorganismo (Supplyetal.,2006). Elmotivodeléxitoactualdeestatécnicaresideenlarapidezyfacilidadderealización juntoconsureproducibilidadycosterelativo(Lindstedt,2005;VanBelkum,2006).Otrodesus grandesbeneficioshasidoeldesarrollodenumerosasbasesdedatosenlíneadelibreacceso quepermiteneldiseño,análisisdesistemasdetipificaciónbasadosenVNTRademásdepermitir larecopilaciónycomparacióndedatosdelaboratoriosdiferentesatravésdelusodeinternet (DenoeudyVergnaud,2004;Allix‐Béguecetal.,2008).
CapítuloI‐Introducción 64 Metodológicamente,latécnicadeVNTRsebasaenelanálisisdeltamañodefragmentos deADNcorrespondientesazonasrepetitivasencontradasenelgenomayamplificadosatravés delatécnicadePCR.Unavezamplificados,estosfragmentossepuedenanalizarpormediode gelesdeagarosaysecuenciacióncapilar,oporotrasaplicacionesmenoscomunescomoloschips deADNyespectrometríademasas(VanBelkumetal.,2006). Laprincipallimitacióndeestatécnicaeslanecesidaddeconocerlasecuenciacompletade ADNdelmicroorganismoaestudiar,porloquehastalafechasehaaplicadosolamenteaun reducidonúmerodeespeciesdemicoplasmas,siendoM.pneumoniae(Dégrangeetal.,2009),M. genitalium(Cazanaveetal.,2012),M.bovis(Pinhoetal.,2012),M.agalactiae(McAuliffeetal., 2008),M.mycoidessubesp.mycoidesSC(McAuliffeetal.,2007),M.hyopneumoniae(Vranckxet al.,2011)lasúnicasespeciescaracterizadashastalafechasgraciasaella.LatécnicadeVNTRha demostradotambiénsuaplicabilidadparaelestudiodecuadrosendémicosybrotesde enfermedaddeformaefectivagraciasasualtopoderdiscriminatorio(Pereyreetal.,2012). 1.2.3.2.1.2. Métodosbasadosenelanálisisdebandasobtenidastrasdigestión enzimática. 1.2.3.2.1.2.1. Electroforesisengeldecampopulsado. LaelectroforesisengeldecampopulsadooPFGE(pulsedfieldgelelectrophoresis)esla técnicadetipificaciónmásutilizadahastalafechaenelcampodelamicrobiologíabacteriana, siendoconsideradacomolatécnicadetipificacióndereferenciaestándar(Goering,2010).Su éxito,apesardesertécnicamentemáscomplejaqueotrascomoRAPDoVNTR,sedebeasugran
CapítuloI‐Introducción 65 reproducibilidadysobretodoalpapeldesarrolladoporPulseNet,laprimerabasededatosdedica alaestandarizaciónyrecopilacióndeperfilesdePFGE,disponiblegraciasaunainiciativade centrodecontrolyprevencióndeenfermedades(CDC)deAtlanta,Estadosunidos,desde1996 (Rangeletal.,2006). YaquenoesnecesarioconocerlasecuenciadeADNdelmicroorganismoaestudiaroel desarrolloalgunodeoligonucleótidosespecíficos,lacapacidaddeaplicarestatécnicasebasa simplementeenunaseriederequisitosdetipotécnico,queaunquedefácilrealizaciónrequieren unagranmanodeobraencomparaciónconotrastécnicasdetipificación.Básicamente,la bacteriaenestudioescultivadahastaalcanzarunaaltaconcentracióndeADN.Entonceslas célulasintactassonrecolectadaseincluidasenpequeñosbloquesdeagarosa,que posteriormenteseránsometidosaunprocesoderestricciónenzimáticaconelfindeescindirel genomadelmicroorganismoenmúltiplesfragmentosdeADNqueseránsometidosauna electroforesisconcambiosdevoltajeofase(electroforesisdecampopulsado)engeldeagarosa dandoalugaraperfilesespecíficosdeADN(Goering,2010). EnelcampodelamicoplasmologíalaPFGEsehaaplicadodeformageneralizadaalagran mayoríadeespeciespatógenas(vertabla1.5). Comounadesusprincipalesaplicacionesenmicoplasmasdestacaelestudiosde variabilidadaniveldeindividuo,dondesehapodidodemostrarcómocepaspuedenpersistir durantelargosperiodosenelmismoindividuoconcambiosmínimosoinexistentesensuperfil dePFGE(Jensenetal.,1998)oaniveldegranja,dondeaisladosobtenidosdentrodelmismo
CapítuloI‐Introducción 66 recintopresentanelmismoperfildeADNapesardegranvariabilidadintraespecíficapresenteen laespeciedeestudio(Kokotovicetal.,2002). EspecieEnzimasderestricciónusadasAñoReferencia M.agalactiaeSmaI,EclXI,BsiWI,MluI,BssHII,SalI,XhoI,NruI,ApaI1999Tolaetal. M.bovisSmaI,EclXI,BsiWI,MluI,BssHII,SalI,XhoI,NruI,ApaI1999Tolaetal. M.capricolumsubesp. capripneumoniae BglII,BamHI,EcoRI,HindIII,NheI,PstI,SmaIandXbaI2001Kusilukaetal. M.fermentansEcoRI,HindIIIyXbaI1998Schaeverbekeetal. M.gallisepticumSmaI2001Maroisetal.(a) M.hominisSmaI,BamHI,XhoI,SalI,ApaI1992 Ladefogedy Christiansen M.hyopneumoniaeApaI,SalI2005Stakenborgetal. M.hyosynoviaeBssHII2002Kokotovicetal. M.mycoidessubesp. capri AviII,BamHI,BlnI,BsiWI,KpnI,SmaI,MluI,SalI,NaeI, SphI,NcoI,StuI 2007Tardyetal. M.mycoides subesp.mycoidesSC BglII,BamHI,EcoRI,HindIII,NheI,PstI,SmaI,XbaI, ApaI,NaeI,SalI,Sau3AI,XhoI 2001Kusilukaetal. M.pneumoniaeApaI,AvaI,NciI,BglI,NaeI,SacII,SmaI,XhoIandSstII2000Cousin‐Alleryetal. M.synoviaeSmaI2001Maroisetal.(b) Enloqueserefiereaestudiosdevariabilidadentreaislados,losresultadosobtenidos dependendelaespeciedemicoplasmaestudiado.Porejemplo,enelcasodeM.agalactiaeseha demostradounagranhomogeneidadentreaisladosrelacionadosestrechamente(Tolaetal., 1996;Solsonaetal.,1996),algoquehasidoconfirmadoigualmenteenelcasodeM.mycoides subesp.mycoidesSCyM.capricolumsubesp.capripneumoniae(Kusilukaetal.,2001)yM. hyopneumoniae(Stakenborgetal.,2005).Sinembargo,enelcasodeM.bovis(McAuliffeetal., 2004),aligualqueenM.hyosynoviae,sehademostradounagranvariabilidadintraespecie, Tabla1.5.UsodePFGEparalatipificacióndelasprincipalesespeciespatógenasdemicoplasmas
CapítuloI‐Introducción 67 demostrandolainfluenciadelaespecieydesuniveldeconservaciónenlosresultadosobtenidos atravésdePFGE. 1.2.3.2.1.2.2. Análisisdepolimorfismosenlalongituddefragmentosamplificadosde ADN. ElanálisisdepolimorfismosenlalongituddefragmentosamplificadosdeADNoAFLP (amplifiedfragmentlengthpolymorphism)esunatécnicadetipificacióndiseñadaen1995por Vosycolaboradoresysuponeunadelastécnicasdetipificaciónmásrobustasyconmayorpoder dediscriminacióndescritas.OtradelasventajasdeAFLPesquepuedeusarsesinconocimiento previodelassecuenciasdeADNaestudiar.Apesardeestosaspectospositivos,elgran inconvenientedesuelevadocosteylimitadadistribuciónanivelcientíficohacequesuaplicación alestudiodemicoplasmahayasidolimitadayactualmenteseaunatécnicaendesuso. Estatécnicacombinaelusodeenzimasderestriccióndecortefrecuenteycorteraroo infrecuenteconPCRespecíficaqueesaplicadaposteriormentealosfragmentosdeADN obtenidostrasdigestiónenzimática.LaPCRespecíficaesrealizadagraciasaunprocesopreviode ligacióndelosfragmentosdeADNobtenidospordigestiónconenzimasderestriccióna adaptadoresdeADNconsecuenciaconocida,frentealosquesehandiseñadooligonucleótidos específicos.UnavezamplificadoslosfragmentosdeADNobtenidosporrestricción,éstospueden serdetectadospordiferentestécnicas,siendolasecuenciacióncapilarelmétododepreferencia (MuelleryWolfenbarger,1999).
CapítuloI‐Introducción 68 AunquelatécnicadeAFLPsehaaplicadoconéxitoenM.hyopneumoniae(Kokotovicet al.,1999),M.bovis(Kusilukaetal.,2000;McAuliffeetal.,2004)yM.capricolumsubesp. capripneumoniae(Kokotovicetal.,2000),esenelestudiodelosmicoplasmasaviares,ymás particularmenteenelcasodeM.gallisepticum,dondeAFLPhademostradoserunaherramienta extremadamenteútil.Usandoestatécnicaparadeanalizarlaevolucióndelaepidemiainiciada porestemicroorganismoenEstadosUnidosen1994yapoyándoseenlosdatosobtenidospor tipificación,laAFLPayudóaconfirmarlateoríadeunorigenúnicodelaepidemiaylaposible introduccióndeunacepaepidémicaindependienteen2001,demostrandosuutilidaden estudiosdetipoepidemiológico(Cherryetal.,2006). 1.2.3.2.1.2.3. Análisisdepolimorfismosenlalongituddelosfragmentosderestricción trasPCR. Estatécnica,denominadacomúnmentecomoPCR‐RFLP(polimerasechainreaction‐ restrictionfragmentlengthpolymorphism)esunatécnicasencillaquecombinaunprocesoprevio deamplificaciónporPCRdeunasecuenciadeADNdianaseguidodeunareacciónenzimáticade restriccióndelADNamplificado.Debidoasunaturaleza,estatécnicapresentaunalimitada capacidaddiscriminatoria,yaquesólopodránllegaraestudiarseaquellasmutacionespresentes enelgendeestudio.Enmicoplasmas,laPCR‐RFLPsehausadoparadistinguirentrecepasdeM. pneumoniaetrasanálisisdelgenP1(Cousin‐Alleryetal.,2000)ocomoherramientaparala diferenciacióndecepasaustralianasyafricanasdeM.mycoidessubesp.mycoidesSCgraciasa unamutaciónmutualdeunsolonucleótidoenelgenbgl(VileiyFrey,2004).
CapítuloI‐Introducción 69 1.2.3.2.2. MétodosbasadosenanálisisdesecuenciasdeADN 1.2.3.2.2.1. Análisisdesecuenciasdegenessencillos Enelanálisisdegenessencillos,dondelainformaciónobtenidaselimitaalanálisisdeun únicogen,presentaciertaslimitacionesdesdeelpuntodevistadelatipificaciónmolecular debidoprincipalmentealalimitadainformaciónpresenteenlasecuenciadeunsologenenlo querespectaavariabilidadintraespecífica. Sinembargoestalimitaciónenelcampodelatipificaciónsetornaenventajaalaplicarse aláreadelataxonomíabacteria,dondelasecuenciacióndegenesúnicos,ymásenparticularen elcasodelgenARNr16S,suponelaprincipalbasedelaclasificaciónbiológicaactualcompuesta portresdominiosyestablecidaporWoeseycolaboradoresen1990.Ademásestegensupone unadelasprincipalesherramientasusadasenlaclasificacióntaxonómicademicoplasmas descritashastalafecha(Johanssonetal.,1998) Aunasí,variostrabajoshandemostradolaaplicabilidaddeestatécnicaalatipificaciónde micoplasmas.Porejemplo,elanálisisdelnúmeroderepeticionesdelaminoácidoserina presentesensecuenciasdelgenp146sehausadosatisfactoriamenteparaelanálisisdecepasde M.hyopneumoniae,ayudandoademostrarlapresenciadecepasespecíficasoclones responsablesdebroteslocalesdeNEP(Mayoretal.,2007).
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 76 Conestosantecedentesdecidimosenfocaresteprimercapítuloeneldesarrolloyanálisis delusopotencialdediferentestiposdetécnicasdetipificaciónaplicadasalanálisisdeM. hyorhinis,ademásdeevaluarlavariabilidadantigénicadeestemicroorganismopormediodela técnicadeWesternblotting. 2.2. Materialesymétodos 2.2.1. Aislados Todoslosaisladosanalizadosconcadaunadelastécnicasdesarrolladasenestecapítulo seencuentranrepresentadosenelanexo2.1deestatesis. 2.2.2. Westernblotting 2.2.2.1. Obtenciónycuantificacióndeantígenos Lascepasdescritasenelanexo2.1fueroncultivadasenmediodeFriis(anexo2.2)a37°C envolúmenesde40ml.Unavezalcanzadalafaselogarítmicadecrecimiento,loscultivosfueron centrifugadosa8000rpmdurante30minutos.Elpelletcelularobtenidofueentoncestransferido atubosdeplásticode2mldevolumentotalylavadosportriplicadoenPBSestéril0.1MpH7.4 (anexo2.3),estavezusandovelocidaddecentrifugaciónde14.000rpm.Todoelprocesode lavadoyrecoleccióndecélulasserealizóa4°C. Traselúltimolavado,lascélulasrecolectadasfueronresuspendidasenPBSestéril0.1M pH7.4usando1/200delvolumeninicialdecultivo.Enestepuntosetomó30µldelasuspensión quefueronreservadosparaposteriorcuantificacióndelaconcentraciónproteica.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 77 Lascélulasrecolectadasseconservarona‐80°Chastalapreparacióndelantígenopara electroforesis. Laestimacióndelaconcentraciónproteicaserealizóusandounkitcomercialbasadoel métododelácidobicinconínicoysiguiendolasinstruccionesdelfabricante(BCAprotein estimationkit‐Pierce). 2.2.2.2. Preparacióndegeles,muestrasySDSPAGE Paranuestrotrabajoempleamosgelesdeacrilamidaal10%loscualesseprepararon usandoelsistemadeelectroforesisPROTEAN®IIxiCell(Bio‐Rad),siguiendolasinstruccionesdel fabricante.Enlatabla2.1seexponenlosvolúmenesdereactivosutilizadosparaprepararlos gelesde15x15centímetrosconseparadoresde1.5mmempleadosennuestrotrabajo. Unavezpreparadoelgelderesoluciónal10%,éstesedejósolidificarparaprocederala adicióndegeldecargaal4%alqueseleinsertóunpeinede15pocillos(5mm/pocillo)antesde quesolidificarayevitandolaformacióndeburbujas. ReactivosGelderesolución Geldecarga 1geles 2geles2geles 10 %10%4 % Acrilamida30%16.6ml 33.2ml5.2ml AguaHPLC20.2ml 40.4ml24.4ml 1.5MTris‐HClpH8.812.5ml 25ml ‐ 0.5MTris‐HClpH6.8 ‐ ‐ 10ml SDS10%500 l1ml200 l APS10%250 l500l200 l TEMED50 l100l20 l Tabla2.1.Volumendereactivosusadosparalapreparacióndegelesdeacrilamida
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 78 Trascalcularlaconcentracióndeproteínasencadaunadelasmuestras,éstasseajustaron aunaconcentraciónde2.5µgporµlempleandoPBSestéril0.1MpH7.4.Conelfindepreparar lasmuestrasparaelectroforesissecombinóuntotalde10µldemuestra(25µgdeproteína total)con10µldebúferdeLaemmli(Sigma‐Aldrich).Unavezcombinadosamboscomponentes, lasmuestrassecolocaronenaguahirviendodurante10minutosparadespuésconservarseen hielohastasuusoposterioruso. Unavezsolidificadoslosgelesseprocedióacargarunvolumentotalde20µldemuestra porcadapocillo,incluyendounmarcadordepesomolecularporgel(PrecisionPlusProtein™Dual ColorStandards,Bio‐Rad)conelfindecompararlospesosmolecularesaparentesdelos determinantesproteicosobservados. Conelfindesepararlasproteínas,losgelessesometieronaunprocesodeelectroforesis utilizandounvoltajeconstantede75vdurante14horasenbúferdeelectroforesis(veranexo 2.3).Unavezfinalizadalaelectroforesisseprocedióalprocesodetransferenciaymarcajede antígenosoWesternblotting. 2.2.2.3. Westernblotting Enprimerlugarseprocedióatransferirlasproteínasseparadasennuestrosgelesde poliacrilamidaaunamembranadenitrocelulosa(Bio‐Rad).Conestefinseempaparonlos papelessecantes(Bio‐Rad)juntoconelgeldurante10minutosenbúferdetransferencia(ver anexo2.3).Trasestepasoseincorporólamembranaalbúferyseesperóotros10minutos.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 79 Acontinuaciónseprocedióalatransferenciaelectroforéticao“blotting”trasprepararun sándwichformadopordospapelessecantesconteniendoelgelylamembranaensuinteriorel cualsesometióaunacorrientecontinuade15Vdurante30minutos.Elblottingserealizó empleandounsistemadetransferenciasemiseco(WolfLaboratoriesLimited). Unavezfinalizado,selavólamembranadenitrocelulosaconaguadestiladaysemarcó posteriormentecontincióndePonceauS(veranexo2.3)conelfindeconfirmarelprocesode transferencia.Unavezdemostradalacorrectatransferenciadelasproteínasalamembranase retirólatincióndePonceautrasvarioslavadosconPBSestéril0.1MpH7.4enexcesohasta eliminarporcompletocualquierindiciodetinción.Loslugaresdeunióninespecíficapresenteen lamembranasebloquearonconsolucióndebloqueo(veranexo2.3)a4°Cdurante16horascon elfindeevitarinmunomarcajeinespecíficoenlamembrana. Traselprocesodebloqueo,lamembranaselavótresvecesconPBST(veranexo2.3)yuna vezconPBS.Cadalavadoduró10minutos.Trasestepaso,lasmembranasseconservarona temperaturaambienteenunlugarfrescoysecohastasuusoporunmáximodetresmeses. Paraelprocesodemarcajeseañadiócomoanticuerpoprimariounantisueroproducido enconejoapartirdelacepadereferenciadeM.hyorhinisBTS‐7(RAS173‐2000,AHVLA Weybridge)usadoaunadiluciónde1/1000enbúferdedilución(veranexo2.3)yenunvolumen finalde20ml,loscuálesseincubaronconlamembranadurante2horasa37°Cyconagitación continua.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 80 Unavezfinalizadalaincubación,lasmembranasselavaroncomosedescribió anteriormente,paraacontinuaciónañadirelanticuerpoconjugadoconperoxidasa(Recombinant ProteinG,Pierce)aunadiluciónde1/1000enbúferdedilución(volumenfinal:20ml).Tras añadirelanticuerposecundariolamembranaseincubódurante2horasa37°Cyenagitación continua. Unavezterminadalaincubaciónconelanticuerposecundariosevolvióarepetirel procesodelavadoparaacontinuaciónrevelarlamembranatrasañadirlasolucióndesubstrato enzimático(4CN4‐cloro1‐naftol,Pierce),lacualseincubóenagitaciónconstanteatemperatura ambientehastaqueseobservóelcambiodecolordeseado(de5a30minutos).Unavez revelada,lareacciónsefinalizóañadiendoaguadestilada. 2.2.3. RandomAmplifiedPolymorphicDNA(RAPD) ElADNempleadoenesteexperimentoseextrajoapartirde1mldecultivodeM. hyorhinisenfaseestacionariausandoelkitdeextraccióndeADNgenómicoGenelutegenomic DNAkit(Sigma‐Aldrich)siguiendolainstruccionesdelfabricante.UnavezextraídoelADNfue cuantificadoporespectrofotometríausandoelsistemaNanodrop1000(ThermoFisher Scientific),paraposteriormenteconservarloa‐20°Chastasuposterioruso. LareaccióndeRAPDsebasóenlametodologíadescritaanteriormenteporArtiushiny Minionen1996,usandounúnicooligonucleótidoindividual(OPB‐105’‐GTCCACACGG‐3’).El procesodeamplificaciónserealizóenunvolumenfinaldereacciónde50µl.Losprincipales componentesdelareaccióndeRAPDseencuentranrecogidosenlatabla2.2.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 81 Unavezcombinadoslosreactivosseañadióun1µldeADNpormuestraconuna concentracióndeentre75y100ng. LareaccionesdeRAPDsellevaronacaboenuntermocicladoriCicler(Bio‐Rad)e incluyeronunprocesodedesnaturalizacióninicialde5minutosa94°C,seguidosde40ciclos divididosen94°Cdurante15segundos,37°Cdurante60segundosy72°Cdurante90segundos. Lasreaccionesseterminaronconunúltimociclode7mina72°C. Reactivo Concentraciónen reacción Volumen(µl)Identificación/fabricante Agua‐ 36.5‐ Búferdereacción10x1X5 Goldbúfer(Applied Biosystems) MgCl21.5nM3AppliedBiosystems Desoxiribonucleótidos trifosfato(dNTPs) 400µM2Promega Oligonucleótido400nM2OPB‐10(ArtiushinyMinion, 1996) Taqpolimerasa2.5unidades0.5AmpliTaqGold(Applied Biosystems) Tabla2.2.VolúmenesdereactivosempleadosporreaccióndeRAPD Losproductosobtenidosunavezfinalizadaslasreaccionessedetectarontrasser sometidosaunprocesodeelectroforesisengelesdeagarosaal2%(Promega)de10cmbajouna corrienteconstantede90Vdurante1.5horasenbúferdeelectroforesis(TBE1X,veranexo2.4).
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 82 Cadagelincluyódospocilloscargadosconunpatróndepesomolecular(Amplisize50–2000bp, Bio‐Rad)encadaextremodelgelconelfindecompararlosperfilesdebandasobtenidostrasla electroforesisyfacilitarelanálisisfilogenético. Traslaelectroforesis,losgelessetiñeronenunasolucióndebromurodeetidio(Sigma‐ Aldrich)aunaconcentraciónde0.5µg/ml.Unavezteñidosseretiróelexcesodetincióncon aguadestiladayseprocedióavisualizaciónbajoiluminaciónultravioletaconelfindeobservar losperfilesdebandas,loscualesfuerongrabadosenformatojpegusandounsistemadecaptura deimágenesdigital(Syngene). LosperfilesdebandasobtenidastrasRAPDseanalizaronempleandoelsoftware bioinformáticodeanálisisdedatosdetipificaciónBioNumericsversión4.5(AppliedMaths, Bélgica).Lasimilitudentrelosperfilesdecepasdiferentesfuecalculadousandoelcoeficientede Dice(1945)conunatoleranciayoptimizacióndel0.5%paraambosparámetros.Laconstrucción dedendrogramassebasóenelusodelmétododeparesnoponderadosutilizandomedia aritméticaoUPGMA(unweightedpairgroupmethodusingarithmeticmeans). 2.2.4. Pulsedfieldgelelectrophoresis(PFGE) 2.2.4.1. Cultivodelascepasyobtencióndelascélulas LascepasdeM.hyorhinissecultivaronenvolúmenesde40mldecultivohastaalcanzarla faseestacionaria.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 83 Unavezalcanzadalaconcentracióncelulardeseadaseprocedióarecolectarlascélulas porcentrifugación,lacualserealizóa8000rpmdurante30minutos.Traselprimerpasode centrifugaciónlascélulasselavaronen10mldePBS+glucosa(veranexo2.5)conelfinde maximizarlacantidaddecélulasintactasalfinaldeprocesoderecolección.Estepasodelavado serepitiótresvecesparafinalmenteresuspenderlascélulasen250µldePBS+glucosa.Todoel procesodeobtencióndecélulasserealizóa4°C. 2.2.4.2. Preparacióndelosdadosdeagarosa Unavezobtenidaslascélulas,éstasseinmovilizaronendadosdeagarosaultrapurade bajopuntodefusión(Bio‐Rad)conelfinpreservarlascélulasyfacilitarelprocesodedigestión enzimática. Losdadosseprepararonapartirdeunasolucióndeagarosaal2%preparadatrasla adiciónde0.2gdeagarosaen10mldeaguabidestilada.Unavezpreparadalasoluciónse calentóenelmicroondashastadisolverlaagarosaporcompletoparaposteriormente conservarlaa45°Cenunbañohastaequilibrarlatemperaturadelamismaparasuposterioruso. AcontinuaciónseprepararondosdilucionesdecélulasenPBS+glucosaenlas proporciones1/5y1/10paraacontinuaciónprocederalapreparacióndelosdadosdeagarosa. Enprimerlugarseprepararontrestubosdeplásticode600µldevolumenfinaldondese distribuyeron60µldecadaunadelasdilucionespreparadasanteriormentejuntoconlasolución inicialnodiluida.Estastresdilucionesseprepararonconelfindeevaluarlaconcentraciónideal decélulasparaelprocesodedigestiónenzimáticayposteriorvisualizacióndelosperfilesde
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 84 bandastraslaelectroforesisengeldecampopulsante.Unavezdistribuidaslascélulasse tomaron60µldesolucióndeagarosalacualsemezclósuavementeconlasuspensióncelular evitandoformarburbujasdeaire. Paraformarlosdadosseañadiócuidadosamente100µldelasoluciónconteniendolas célulasylaagarosaenmoldesdedadosreutilizablesde5mmx5mm(Bio‐Rad).Losdadosse mantuvieronatemperaturaambientedurante30minparaposteriormentetrasladarlosa4°C conelfindeobtenerlasolidificacióntotaldelosmismos. 2.2.4.3. Lisiscelularydigestiónproteica Enprimerlugarsellevóacabolalisiscelularydigestiónproteicaconelfindeexponerel ADNdeM.hyorhinisalaenzimaderestricciónyeliminarcualquierproteínaquepudiera interferirconelprocesodedigestiónenzimáticayelectroforesis. Conestefinseprepararontantostubosdeplásticode2mlcomodadosdeagarosafueron obtenidosenelpasoanterior.Estostubosseidentificaronconlacepaydilucióncorrespondiente paraposteriormenteañadir0.5mldebúferdelisis(veranexo2.5)acadauno.Acontinuaciónse añadieronlosdadosdeagarosadentrodelostubosasegurandoelcontactoconelbúferdelisisy secolocaronenunagradillaalbañomaríaa45°Cdurante24horas. Traselprocesodelisisydigestiónselavaronlosdadosconelfindeeliminarelexcesode búferdelisisyproteinasaK.Paraelloseañadieron2mldebúferTE1X(Sigma‐Aldrich)quese dejaronreposarconlosdadosdurante20minutosantesdeserretirados.Esteprocesoserepitió
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 85 tresveces.Unavezterminadosloslavadosseañadió1mldeTE1Xyseconservarona4°Chasta suposteriorusoyporunmáximode6meses. 2.2.4.4. Digestiónenzimática Enprimerlugarsecortaron3mmdeagarosadecadaunodelosdadosysecolocaronen 200µldeTE0.1Xparaposteriormenteserincubadosatemperaturaambientedurante30min. Acontinuaciónseprepararonlasreaccionesdedigestiónenzimáticasiguiendolas instruccionesdelfabricanteyutilizando40unidadesdecadaunadelasenzimasderestricción evaluadasporreacción.Todaslasenzimasderestricción,susrespectivosbúferesderestriccióny laalbúminaséricabovinausadaenlasreaccionesdedigestiónenzimáticaparaPFGEse obtuvierondeNewEnglandBiolabs.Conelfindeconocerlaenzimaderestricciónidealse evaluaronlassiguientesenzimas:ApaI,SalI,SmaI,BamHI,SacI,KpnI,XhoI,SacIIyNheIHF.Las reaccionesdedigestiónenzimáticaseprepararondelasiguienteforma: Volumenfinalpormuestra–200µl: o Aguabidestilada: 176l o 10xBúfer1‐4*(NewEnglandBiolabs): 20l o 100xalbúminaséricabovina(NewEnglandBiolabs): 2l o Enzimaderestricción(20U/l)**(NewEnglandBiolabs): 2l *dependiendodelaenzimaautilizar **añadirtrasequilibradoconbúfer
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 92 IdentificaciónSecuencia5’‐3’Tamañoenbp LocalizaciónM.hyorhinisHUB‐1 MHR‐TR1‐FTGACTTGTTTTCCTGTAGC268pb456600–457150 MHR_0358–proteínahipotética MHR‐TR1‐RCTAACAAGTGCTTCTATGCC MHR‐TR2‐FGAATACGATTAGTTTGTAC436pb58100–58700 MHR_0044–reguladordetranscripción MHR‐TR2‐RATAACCGTGGTTTTAAGGC MHR‐TR3‐FGAACAACCACTGGAACTGGC371pb433700–434300 MHR_0337–vlpD MHR‐TR3‐RGTATCTATATTTTAGACAC MHR‐TR4‐FTCTGGAACAACAACAGGTG785pb442700–443500 MHR_0349–vlpC MHR‐TR4‐RGTGGCAGTAGCCATAGC MHR‐TR5‐FGCAAATGGTTCAGGAAACG452pb434600–435100 MHR_0338–vlpE MHR‐TR5‐RCAGTCTGTTTTATATGAC MHR‐TR6‐FGCTCTTACATTGTGTCC205pb815100–815400 MHR_0660–proteínaputativasincaracterizar MHR‐TR6‐RCGGTTGTAGTTAATCCGC MHR‐TR7‐FCACCAACTGAAGTATATGC244pb690300–690600 MHR_0561–proteasaLadependientedeATP MHR‐TR7‐RGAATTTATAATCAGAAGC MHR‐TR8‐FGAATAATAATAACCTTCAG253pb478700–478950 MHR_0370–transportadorputativoABC MHR‐TR8‐RCTTTTGTTATTACAGTTGC MHR‐TR9‐FCACACCTAGAAAAGCAGC210pb 182500–182850 MHR_0149–sistemadetransporte multidrogasABC MHR‐TR9‐RGCACAACGTTTTGAACAAGC MHR‐TR10‐FCACCACATAATTACGAGAC285pb82100–82500 MHR_0061–lipoproteínasincaracterizar MHR‐TR10‐RGGTGAAAGAGCTAATGTTGC MHR‐TR11‐FTTTAATAATGTCTTCTCAGTC369pb384000–384300 MHR_0298–proteínahipotética MHR‐TR11‐RGTTGATCCCAAACTTGCTTCAC MHR‐TR12‐FTTAAGAAAAGGGTATCACCTC209pb48000–48300 MHR_0040–transportadorABC MHR‐TR12‐RATTCAAGTTATAAATTCTGGA MHR‐TR13‐FCTTTACATTAATTCTCCTTTGTG201pb322600–322900 MHR_0251–proteínaputativasincaracterizar MHR‐TR13‐RGACAAAGATACAATAGCAGATGATC MHR‐TR14‐FTGTAACTTGTCCTCTAACTGGG323pb487422to487861 MHR_0683–proteínaribosómica50SL36 MHR‐TR14‐RACAAGGATTAATGAAATATGGC MHR‐TR15‐FATAATTGCCATCGCAACTGC392pb 573100–573500 MHR_0466–sistemadetransportede espermidina MHR‐TR15‐RAACATGACTAGAATCCTTGAC MHR‐TR16‐FGAAGAGGTAATGACGACTCC438pb587500–588000 MHR_0479–proteínaribosómica50SL27 MHR‐TR16‐RATTGCTTCACTTTCTTCAGC MHR‐TR17‐FTGTTCATTTGCTTGGGTTGG 343pb 640672–641159 MHR_0523–proteínahipotética MHR_0524–posibleGTPasa,posiblefactorde translación MHR‐TR17‐RTCGCCATATGTAATTACATC MHR‐TR18‐FAAAGGAGATGATTTACACAGTG242pb675400–675850 MHR_0551–proteínahipotética MHR‐TR18‐RGTATCTGTATAGTGTTCTAAGG MHR‐TR19‐FCTAAAGCAAAGTCATCGTG237pb751950–752300 MHR_0610–chaperoninahipotéticade33kDa MHR‐TR19‐RTATCTGATTTTACACAAGTAGC MHR‐TR20‐FCTTGAAGAACTAAGATAATGTG 273pb 826400–826800 MHR_0669–proteínahipotética MHR_0670–proteínahipotética MHR‐TR20‐RTGGTTGAGAAAGATAATTCAC Tabla2.3.CaracterísticasdelosoligonucleótidosseleccionadosparaelanálisisdeVNTR
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 93 Todoslosoligonucleótidossediseñaronconunatemperaturadealineamientocercanaa los58°CconelfindeestandarizarlasreaccionesdePCR.Latemperaturadealineamientoideal secomprobótrasunaPCRcongradientedetemperaturasdealineamiento.EstaPCRdemostró que58°Cfuelatemperaturaidealenestepaso,porloqueseempleóentodoslosprocesosde amplificacióndeVNTR. 2.2.6.3. ReaccionesdePCR,electroforesisyanálisisdedatos Lassecuenciasrepetitivasseleccionadasseamplificaronusandolosoligonucleótidos descritosanteriormente.LacomposicióndecadareaccióndePCRseencuentrarecogidaenla tabla2.4. Reactivo Concentraciónen reacción Volumen(µl)Identificación/fabricante Agua‐ 35.75‐ 5XGreenGoTaqbúfer1X10Promega Desoxiribonucleótidos trifosfato(dNTPs) 0.2mMcadauno1Promega OligonucleótidoF200Nm1Sigma‐Aldrich OligonucleótidoR200nM1Sigma‐Aldrich Taqpolimerasa1.25unidades0.25GoTaq(Promega) ADN‐ 1‐ Tabla2.4.VolúmenesdereactivosempleadosporreaccióndeVNTR
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 94 LascondicionesdelareaccióndePCRincluyeronunciclodedesnaturalizacióninicialde5 minutosa95°Cseguidode35ciclosdivididosentrespasos:desnaturalizacióna95°Cdurante45 s,alineamientoa58°Cdurante30syextensióna72°Cdurante30s.Parafinalizarserealizóun pasodeextensiónfinalde5minutosa72°C.Todaslasreaccionessellevaronacaboenun termocicladoriCicler(Bio‐Rad). LaamplificacióndelVNTResperadosecomprobótrassepararlosproductosdePCRen gelesdeagarosade27cmdelongitudyconunaconcentraciónde2.5%duranteunprocesode electroforesisde2.5haunvoltajeconstantede75v.Acontinuaciónsetiñeronlosgelesen bromurodeetidio(Sigma‐Aldrich)aunaconcentraciónde0.5µg/ml.Trasteñirseseretiróel excesodebromurodeetidioconaguadestiladayseobtuvounaimagendelosperfilesdebandas enformatojpegempleandounsistemadecapturadeimágenesdigital(Syngene)trasiluminación ultravioleta. CadaVNTRseanalizóporseparadootorgándoseacadabandadeADNobservadaenlos gelesunnúmerodeidentificacióndependiendodelpesomoleculardelamisma.Lacombinación deindentificadoresindividualesprodujounidentificadorúnicodenominadotipodeVNTR(VT). Unavezobtenidoslosdiferentesindicadoresnuméricos,yconelfindeevaluarlasposibles relacionesevolutivasentretipoddeVNTR(VTs),seprocedióalanálisisgráficodelosmismos mediantelacreacióndeunárbolrecubridormínimooMST(delinglésminimumspanningtree) obtenidoatravésdelusodelalgoritmomatemáticogoeBURST(Franciscoetal.,2009).Este algoritmofueimplementadograciasalsoftwarebioinformáticoPhyloviz(Franciscoetal.,2012).
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 95 2.2.7. Análisisestadístico ElíndicedediversidaddeSimpson(IDS),empleadoparacalcularlacapacidad discriminatoriadetécnicasdetipificación,secalculódeacuerdoalametodologíadescritapor HunteryGaston(1988)paraelíndicedediversidadyladescritaporGrundmannycolaboradores (2001)paraelcálculodeintervalosdeconfianza(IC)delmismo.ElIDS,quepuedepresentar valoresentre0(mínimadiversidad)y1(máximadiversidad),determinalaprobabilidaddeque dosaisladosmuestreadosalazarenunapoblaciónpertenezcanadosgruposdiferentes, proporcionandoporlotantounindicadordelacapacidaddediscriminacióndecualquiertécnica detipificación.Estevalorindicaporejemploqueenunsistemadetipificaciónmolecularconun IDSde0.91,dosmuestrasseleccionadasdeformaarbitrariaenunapoblaciónbacterianatienen un91%deposibilidadesdeperteneceragruposdiferentesalseranalizadosconlatécnicade caracterizaciónmolecularcorrespondiente. Losintervalosdeconfianzaentretécnicasdetipificaciónmolecularjuntoconelnivel cuantitativodecongruenciaentretécnicassecalculósiguiendolametodologíadescritapor Severianoycolaboradores(2011)empleandoelcoeficienteajustadodeWallaceconelfinde cuantificarelnivelderelaciónentremétodoseindicarlaposibilidaddequedosaislados clasificadosenundeterminadoclusterporunatécnicadetipificacióndeterminadapertenezcan almismoalclusteralusarunatécnicadetipificacióndiferente.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 96 2.3. Resultados 2.3.1. Westernblotting LosresultadosdeWesternblottingincluyendolas41cepasanalizadasporestatécnicase puedenobservarenlasfiguras2.2,2.3y2.4. LosperfilesdeWesternblottingdemostraronunagranhomogeneidadentrelosaislados. Dentrodelosprincipalescomponentesantigénicoscabedestacardosproteínasde aproximadamente75kDa,60kDay49kDadepesomolecularaparente,quesepresentaronde formainvariableentodoslosaisladosanalizadosconuninmunomarcajebastanteevidente, presentandolimitadavariabilidadenintensidad. Ademásdeestasdosproteínas,otroepítopobastanteconservadoselocalizóenelárea correspondientealos23kDadepesomolecularaparente,aunquelavariabilidadenlaintensidad delareacciónfrenteaestaproteínaesbastantemenorquelaobservadaenloscasosanteriores. Laprincipaláreadevariabilidadobservadacorrespondióalaregióncomprendidaentre40 y46kDadepesomolecularaparente.Dentrodeestaáreasepudierondiferenciar4diferentes tiposdeperfilesdebandas,cadaunodeellosformadosporentre4y2proteínasintensamente marcadas.Enlafigura2.1sepuedeobservarladistribucióndecadaunodeestostiposenlas cepasestudiadas.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 97 Figura2.1.TiposdeWesternblottingydistribuciónpororigen Siguiendoestaclasificaciónsepudoobservarcómolamayoríadelascepasanalizadasse localizaroneneltipodeWesternblottingnúmero2(56.1%deltotaldecepas).Lamayoríadelas cepasconorigenenlasIslasCanarias(66.7%‐12de18)yenlaEspañapeninsular(72.7%‐8de 11)seagruparondentrodeestetipodeWesternblotting,incluyendoademásunapequeña proporcióndecepasdelReinoUnido(27.3%‐3de11). ElsegundogrupoenvolumendeaisladoscorrespondealtipodeWesternblotting1(36.6 %deltotaldecepasanalizadas).Estegrupo,ademásdeconteneralamayoríadelascepasde ReinoUnido(54.5%‐6de11),incluyealacepadereferenciaBTS‐7yacasiunterciodelas cepasrepresentativasdelasIslasCanarias(27.8%)ylaEspañapeninsular(27.3%).Ademásde estosdostiposdeWesternblottingmayoritariosdestacalapresenciadedosgruposatípicos caracterizadosporlafaltadeinmunomarcajeenlasproteínasdemayorpesomoleculardentro Tipode inmunoblotOrigenAislados portipo Porcentaje de aislados portipo Porcentaje de aislados pororigen 1 Cepadereferencia12,4%100,0% España 37,3% 27,3% IslasCanarias512,2%27,8% ReinoUnido614,6% 54,5% Totalperfil1 1536,6% 2 España 819,5% 72,7% IslasCanarias1229,3%66,7% ReinoUnido37,3% 27,3% Totalperfil2 2356,1% 3IslasCanarias12,4% 5,6% ReinoUnido12,4%9,1% Totalperfil3 24,9% 4ReinoUnido12,4% 9,1% Totalperfil4 12,4% Númerototalde aislados41100,0%
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 98 deestegrupoycercanasalos47kDadepesomolecularaparente.Eltipo3deWesternblotting incluyesólodosrepresentantesconorigenenelReinoUnidoeIslasCanarias.Eltipo4de Westernblottingincluyesolamenteunrepresentante(cepa80p04),conorigenenelReino Unido.Losperfilesasignadosacadaunadelascepasseencuentranrepresentadosacontinuación enlatabla2.5. IdentificaciónOrigenTipoIdentificaciónOrigenTipo BTS‐7Cepadereferencia1Rmr16España1 GC37IslasCanarias1Rmr7España2 DIslasCanarias1Rmr12España2 36IslasCanarias1Rmr17España2 65IslasCanarias1Rmr19España2 8B1IslasCanarias1Rmr8España2 22IslasCanarias2Rmr15España2 25IslasCanarias2Rmr21España2 54IslasCanarias2Rmr9España2 62IslasCanarias264p04ReinoUnido1 UIslasCanarias261p07ReinoUnido1 8IslasCanarias210p04ReinoUnido1 46IslasCanarias235p06ReinoUnido1 GC91IslasCanarias267p07ReinoUnido1 76IslasCanarias257p05ReinoUnido1 4IslasCanarias2112p03ReinoUnido2 PIslasCanarias258p04ReinoUnido2 ZIslasCanarias235p07ReinoUnido2 Ove1IslasCanarias390p03ReinoUnido3 Rmr14España180p04ReinoUnido4 Rmr3España1 Tabla2.5.ClasificacióndelosaisladosanalizadosporlatécnicadeWesternblottingbasadaenladiferenciasobservadas enlaregiónvariablede40a46kDa.
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 99 Figura2.2.MembranainmunomarcadarepresentandoalgeldeSDSPAGEnúmero1
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 100 Figura2.3.MembranainmunomarcadarepresentandoalgeldeSDSPAGEnúmero2
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 101 2.3.2. RAPD ElanálisisdeRAPDrealizadoconelcebadorOPB‐10produjo27perfilesdiferentesenun totalde41cepasanalizadas.Elnúmerodebandasporperfilvarióentre3y9bandasconunpeso Figura2.4.MembranainmunomarcadarepresentandoalgeldeSDSPAGEnúmero3
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 108 Tabla2.7.Distribucióndepulsotipospororigengeográfico PulsotipoOrigenPorcentajeenrelaciónal origen Porcentajetotalde aislados ARU,ESP,IC RUESP IC 57.5%(23/40) 90.9% (10/11) 40% (4/10) 50% (9/18) A1RU,ESP,IC RUESP IC 47.5%(19/40) 90.9% (10/11) 40 % (4/10) 27.8 % (5/18) A1aRU,ESP,IC RUESP IC 42.5%(17/40) 72.7% (8/11) 40 % (4/10) 27.8 % (5/18) A1a1RU,ESP,IC RUESPIC 27.5%(11/40) 72.7% (8/11) 20 % (2/10) 5.5 % (1/18) A1a1aRU,ICRU IC 17.5%(7/40) 54.5%(6/11)5.5%(1/18) A1a1bRU,ESP RU ESP 10%(4/40) 18.2%(2/11)20 % (2/10) A1a2ESP,ICESPIC15%(6/40) 20%(2/10)22.2%(4/18) A1bRURU 5%(2/40) 18.2 %(2/11) A2IC IC10%(4/40) 22.2%(4/18) BESP,IC,REF ESP IC REF 37.5%(15/40) 50% (5/10) 50 % (9/18) 100 % (1/1) B1ESP,IC,REF ESP IC REF 17.5%(7/40) 50% (5/10) 5.5 % (1/18) 100 % (1/1) B2ICIC 20%(8/40) 44.4 %(8/18) CRURU 2.5%(1/40) 9.1 %(1/11) DESPESP 2.5%(1/40) 10 %(1/10)
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 109 Figura2.7.Distribucióndepulsotipospororigengeográfico
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 110 2.3.4. Southernblotting–IS1221 2.3.4.1. Producciónyevaluacióndesondamarcada ElproductodePCRobtenidoconlosoligonucleótidosIS1221‐F‐2yIS1221‐Rpresentóuna homologíadel100%conlasecuenciaderefenciaU01217.1traselanálisisrealizadocon MegaAlign. Laeficienciadelareaccióndemarcajecondigoxigeninasecomprobóporelectroforesisen geldeagarosadelproductoamplificadoenlareaccióndemarcajeysiguiendolasinstrucciones delfabricante.Debidoalapresenciadedigoxigenina,losproductosdePCRmarcadosmigranmás lentamentequelosproductosdePCRsinmarcaraúnteniendoelmismopesomolecular(figura 2.8). Figura2.8.Evaluacióndesondasmarcadas
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 111 2.3.4.2. Análisisdeperfilesdebandasdehibridación Enlafigura2.9sepuedeobservarunejemplorepresentativodelosperfilesdebandasen unamembranadenilónmarcada.ElanálisisderepeticionesdelasecuenciadeinserciónIS1221 porSouthernblottingdemostrólapresenciadeentre14y23repeticionesporaislado. Figura2.9.Imagenrepresentativadeunamembranadenylonreveladatrasla hibridaciónconlasondamarcadaparaladeteccióndelasecuenciaIS1221.Cadabanda correspondeaunacepadeM.hyorhinis
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 112 ElanálisisdebandasbasadoenBioNumericsdemostróunagrandiferenciaentreaislados, conunporcentajedesimilitudcomprendidoentreel35y90%(figura2.10).Apesardeestas grandesdiferenciasentreaisladossedemostróunamarcadaasociaciónentreaquellosconel mismoorigengeográfico.ElgrupoA,compuestopor20aislados,agrupóalagranmayoríadelos representantesdelReinoUnido,englobandoal94%delosaisladosbritánicos(16de17deltotal deaisladosconesteorigen)conlaexcepcióndelaislado80p04,queselocalizóenelgrupoB1. Además,elgrupoAincluyóadosaisladosprocedentesdelasIslasCanariasydelapenínsula española,representandoel11.7%(2de17deltotaldeaisladosconesteorigengeográfico)yel 13.3%(2de15deltotaldeaisladosconesteorigengeográfico)respectivamente. ElgrupoB1,formadopor8representantes,presentóunacomposiciónmixtaformada mayoritariamenteporaisladosprocedentesdelasIslasCanarias(5de17deltotaldeaisladoscon esteorigengeográfico),juntoconlosaisladosRmr3yRmr11,conorigenenlaEspañapeninsular (2de15deltotaldeaisladosconesteorigengeográfico),ademásdelaisladoprocedentedel ReinoUnidoanteriormentemencionado. ElgrupoB2agrupóalagranmayoríadelosaisladosprocedentesdelapenínsulaespañola, concentrandoal73.3%detodoslosaisladosconesteorigengeográfico(11de15cepastotales analizadas).Ademásenestegrupotambiénselocalizaron4aisladosconorigenenlasIslas Canarias(23.5%deltotaldeaisladosconesteorigen)juntoconlacepadereferenciadeM. hyorhinis. ElgrupoCconstituyóelgrupoconmenornúmeroderepresentantes,conuntotalde6 aisladosentotal.Estegrupoestuvocompuestoexclusivamenteporaisladosprocedentesdelas
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 113 Tabla2.8.DistribucióndeaisladosporgruposdeSouthernblotting.Elvalorentre paréntesisindicaelnúmerodecepasporeltotaldelrespectivoorigengeográfico IslasCanarias(35.2%deltotaldeaisladosconesteorigengeográfico).Ladistribucióndeaislados portipodeSouthernblottingsepuedeobservarenlatabla2.8. Grupode Southern blotting OrigenPorcentajeenrelaciónal origen Porcentajetotalde aisladosengrupo ARU,ESP,IC RU ESP IC 40%(20/50) 94.1% (16/17) 13.3% (2/15) 11.7% (2/17) BRU,ESP,IC,REF RU ESP IC REF 48%(24/50) 5.9 % (1/17) 86.7 % (13/15) 53% (9/17) 100 % (1/1) B1ESP,IC,RU ESP IC RU 16%(8/50) 13.3 % (2/15) 29.4 % (5/17) 5.9 % (1/17) B2ESP,IC,REF ESP IC REF 32%(16/50) 73.4 % (11/15) 23.6 % (4/17) 100 % (1/1) CICIC 12%(6/50) 35.3 %(6/17)
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 114 Figura2.10.DendrogramaobtenidotraselanálisisdeperfilesdebandasdeSouthernblotting
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 115 2.3.5. VNTR Laevaluacióndelosdiferentesparesdeoligonucleótidospreviamentediseñados demostrócómosolamente2regionesrepetitivasenelgenomadeM.hyorhinisBTS‐7 presentarondiferenciassuficientesparaserdetectablestraslaelectroforesisengelesde agarosa.Porlotanto,sólolasregionesMHR‐TR‐2(reguladordetranscripción)yMHR‐TR‐6 (proteínaputativasincaracterizar)fueranempleadasparaelanálisisdeaisladosatravésdeesta técnica. Figura2.11.MSTrepresentandolasrelacionesfilogenéticasentretiposdeVNTR(VT) obtenidastraselanálisisdeVNTR
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 116 Tabla2.9.DistribucióndeVTpororigen Entotalseobtuvieron21VTsdiferentestraslacombinacióndelosdiferentesperfilesde bandasobservadosapartirdelanálisisdelasregionesrepetitivasanteriormentedescritas.La distribucióndeaisladosporVTseencuentrarepresentadaenlatabla2.9. VT Número de aislados porVT Porcentaje con respectoal totalde aislados ReinoUnido España IslasCanarias M.hyorhinis ref. 4711,5%322‐ 1269,8%3‐3‐ 1469,8%1‐5‐ 1769,8%6‐ ‐ ‐ 1058,2%2‐3‐ 346,6%13‐ ‐ 946,6%‐4‐ ‐ 1134,9%‐‐3‐ 1334,9%111‐ 234,9%‐21‐ 1623,3%2‐ ‐ ‐ 1823,3%2‐ ‐ ‐ 2023,3%2‐ ‐ ‐ 111,6%‐‐‐1 1511,6%‐1‐ ‐ 1911,6%1‐ ‐ ‐ 2111,6%1‐ ‐ ‐ 511,6%‐‐1‐ 611,6%‐1‐ ‐ 711,6%‐1‐ ‐ 811,6%‐1‐ ‐ Total:612516191
CapítuloII–Análisisdevariabilidadgenéticayproteica 117 Lafigura2.11representaunMSTobtenidotraselanálisisfilogenéticoconelsoftware bioinformáticoPhyloviz.EsteanálisisseñalaalST4(11.5%deltotaldeaisladosanalizados), formadoporrepresentantesdelReinoUnido(3de25),Españapeninsular(2de16)eIslas Canarias(2de19)comoelancestrocomún,relacionándoloestrechamenteconelVT12,VT14y VT19,queasuvezfueronconsideradosporesteanálisiscomosub‐ancestros.LosdemásVTs fueronconsideradosconVTsasociados.VT11,VT13,VT16yVT19,unidosporunalíneaamarillaa cadaunodesusgruposasociados,presentaronelmayorniveldevariabilidadencomparación coneltotaldelosdiferentesgruposdeVNTRdescritos. 2.3.6. Análisisestadístico Sólolosaisladostipificadosempleandocadaunadelastécnicasdescritasanteriormente fueronutilizadosenelanálisisestadísticofinal.Losaisladosempleadosjuntoconlosperfiles asignadosacadaunodeellosporlasdiferentestécnicasdetipificaciónseencuentranrecogidos enelanexo2.1. LosresultadosobtenidostraselanálisisdelindicedediversidaddeSimpson(IDS)delas diferentestécnicasdemuestracómolatécnicadeSBpresentalamayorcapacidaddiscriminatoria encomparaciónconlasotrastécnicastestadas,seguidaestrechamentepordelatécnicade PFGE,RAPDyVNTR.Todaslastécnicaspresentaronunniveldediscriminacióncercanoal0.95 porloqueseconsiderancomobuenossistemadetipificación(vertabla2.10).
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 220 statisticaldifferencesinbacterialloadobservedbetweennasalswabsandlungtissueat28DPI wasalsoevaluatedfollowingthesameprocedure. Inaddition35researchsamplesobtainedfromdeUniversityofLasPalmasdeGran Canaria–VeterinaryFacultyandisolatedfromdifferentareasoftheSpanishmainlandand CanaryIslandsandM.hyorhinisBTS‐7(referencestrain)wereevaluated(table4.8). IsolateIDOriginIsolationdateIsolateIDOriginIsolationdate Reference strain‐BTS‐7UnitedStates19558CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr3Spain200522CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr7Spain200525CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr8Spain200536CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr9Spain200545CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr10Spain200546CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr11Spain200554CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr12Spain200562CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr14Spain200565CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr15Spain200576CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr16Spain2006DCanaryIslands ‐Spain2002 Rmr17Spain2006PCanaryIslands ‐Spain2002 Rmr18Spain2006UCanaryIslands ‐Spain2002 Rmr19Spain2006ZCanaryIslands ‐Spain2002 Rmr20Spain20068B1CanaryIslands ‐Spain2002 Rmr21Spain2006Ove1CanaryIslands ‐Spain2006 Rmr22Spain2006GC37CanaryIslands ‐Spain2006 4CanaryIslands‐ Spain2002GC91CanaryIslands ‐Spain2006 Table4.8.ResearchsamplesanalysedbyM.hyorhinisrpoBqPCR
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 221 OthercommonMycoplasmaspeciesreferencestrainsandgeneralbacteriaisolatedfrom pigswerealsotested(table4.9). IsolateSpecies JM.hyopneumoniaea S16M.hyosynoviaea H3‐6B‐FM.hyopharyngisa Ms42M.floccularea G230M.argininia Y04779Bordetellabronchisepticab Y04744Pasteurellamultocidab Y04243Actinobacillussuisb Y04436Trueperellapyogenesb 1374Haemophilusparasuisa 735Streptococcussuisa M62Actinobacilluspleuropneumoniaea Table4.9.CommonMycoplasmaspeciesreferencestrainsandporcinebacterialisolatesusedinM.hyorhinisqPCR specificitytesting.aNCTCreferencestrain,bCourtesyofJonRogers(AHVLABurySt.Edmunds,UK) 4.3. Results 4.3.1. ELISAdevelopment 4.3.1.1. Antigenandconjugateselection Therewasnosignificantdifferencebetweenthepositiveandthenegativecontrolwiththe wholewashedantigenandTween20washedcellandsupernatant. Pre‐boiledantigenwasthebestperformingantigenanOD450of1to1.5forthepositive (136b‐28DPI)and0.08to0.14forthenegativecontrol(RVC111b‐0DPI)andwastherefore selectedasthestandardantigenforourtest.
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 222 ProteinG(Pierce)wasselectedasthebestperformingconjugate.Workingdilutionranged from1/2000to1/4000alwaysdeterminedbychequerboardaftereachnewbatchofantigenwas produce. ArepresentativeM.hyorhinisiELISAchequerboardplatecanbeseeninfigure4.7. 4.3.1.2. EstimationofthepredictiveabilityoftheELISAtest ThehighestOD450valueprovidingthebestspecificity‐sensitivitycombinedvaluewas selectedascut‐offpointforpositivesamples(table4.10). Acut‐offpointof0.25wasselectedtodetermineapositivesamplewhentestedwithM. hyorhinisiELISAmethodinaccordancewiththehighestcombinedSe‐Spvalue(141.26).Suspect rangewasestablishedbetweenOD4500.2and0.25. Usingthiscut‐offpoint,aspecificityof82.93%andasensitivityof58.33%wasobtained. Figure4.7.M.hyorhinisiELISAchequerboardplate.Positiveserumaddedin columns1,3,5,7,9,11.Negativeserumaddedincolumns2,4,6,8,10,12.
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 223 Table4.10.Positivecut‐offpointsandrelativespecificityandsensitivity A2x2contingencytablecomparingWesternblottingandiELISAresultsandincludingthe standardandcorrectedpositiveandnegativepredictivevalueoftheiELISAcanbeobservedin table4.11. Table4.11.ContingencytablecomparingWesternblottingandiELISApositiveandnegativeresults Whenusingthe0.25cut‐offpointappliedtosamplesetC,anestimatedseroprevalenceof 55.7%wasdeterminedforthisarrayofsamplescollectedthroughoutUK(n=798). Cut‐offpoint (OD450) Se(%)Sp(%)CombinedCut‐offpoint (OD450) Se(%)Sp(%)Combined 0,187,57,3294,820,5531,2597,56128,81 0,1585,4237,8123,220,629,1797,56126,73 0,17579,1759,76138,930,6527,0897,56124,64 0,272,9267,07139,990,722,9297,56120,48 0,22562,575,61138,110,7522,9298,78121,7 0,2558,3382,93141,260,820,83100120,83 0,352,0887,8139,880,8520,83100120,83 0,3547,9291,46139,380,916,67100116,67 0,441,6795,12136,790,9516,67100116,67 0,4539,5895,12134,7110,42100110,42 0,531,2596,34127,59 WesternBlotting ELISAresult+‐ GrandTotalStandardPPV andNPV Corrected PPVand NPV +281442PPV 66.7% PPVb 81.1% ‐ 206888NPV 77.3% NPVb 61.2% GrandTotal4882130 Se=58.33%Sp=82.92%
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 224 APPVandNPVof66.7%and77.3%respectivelywereobtainedwhenusingstandard formulae.Whentheprevalence‐correctedformulaewereappliedagreatincreaseinthePPVand reductionintheNPVoftheiELISAwasobserved. 4.3.1.3. Crossreactivity NocrossreactivitywiththecloselyrelatedmycoplasmaM.hyopneumoniaewasobserved aftertestingpositivesamplesobtainedfromtheexperimentalinfection. 4.3.1.4. Kappa‐statisticmeasureofinter‐rateragreement(strengthofagreement) Theagreementbetweenprocedureswascalculatedusing0.25OD450cut‐offpoint.Theκ valuesobtainedrangedfromgoodtoverygood.Averygoodagreementbetweenoperatorswas obtained(table4.12,κvalue:0.91).SamplesetB(samples1to90)wasusedforthispurpose. Table4.12.Agreementcalculationbetweentwodifferentoperators Goodagreementwasobservedbetweenrepeats(table4.13,κvalue:0.73).SamplesetB (samples1to90)werealsousedinthissituation. Operator1Operator2 Total +‐ +32234 ‐ 26062 Total346296 AgreementExpectedagreementKappaStd.Err.ZProb>Z 95.83%54.25%0.90890.10218.910.0000
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 225 Repeat1Repeat2Total +‐ +17320 ‐ 67076 Total237396 AgreementExpectedagreementKappaStd.Err.ZProb>Z 90.63%65.19%0.73070.10167.190.0000 Table4.13.AgreementcalculationbetweeniELISArepeats Agoodagreementwasalsoobservedbetweendifferentantigenbatches(κvalue:0.68‐ samplesetB(1‐90),table4.14,0.85‐samplesetB(91to180)table4.15). Batch1(1‐90)Batch2(1‐90)Total +‐ +13720 ‐ 27476 Total158196 AgreementExpectedagreementKappaStd.Err.ZProb>Z 90.63%70.05%0.68700.10056.830.0000 Table4.14.Antigenbatchvariationagreementcalculationbetweentworepeats‐samplesetB(samples1to90) Batch1(91to 180) Batch2(91to180)Total +‐ +10313 ‐ 08383 Total108696 AgreementExpectedagreementKappaStd.Err.ZProb>Z 96.88%78.86%0.85220.10098.440.0000 Table4.15.Antigenbatchvariationagreementcalculationbetweentworepeats‐samplesetB(samples91to180)
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 226 4.3.2. MycoplasmahyorhinisqPCRdevelopment 4.3.2.1. Primerdesign Nosignificantsimilaritieswereobservedbetweentheprimersdesignedandanyother bacterialspeciesafterBLASTanalysis.Figure4.8showsarepresentativesequencealignment includingbothforwardandreverseprimersalignedagainstthemostcommonMycoplasma speciesisolatedfrompigs. Figure4.8.Forwardandreverseprimeralignment Nucleotidesinredrepresentidentitymatcheswitheachprimer.Afullmatchagainstour primerswasobservedwhencomparedallM.hyorhinisrpoBgenesequencesavailable.
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 227 4.3.2.2. Primerconcentrationevaluation TheprimercombinationofMHR‐rpobFat300nMandMHR‐rpobRat900nM demonstratedtobethebestperformingfinalconcentrationperreactionandthereforeselected forallsubsequentreaction.Figure4.9representstheamplificationcurvesshowingthe differencesinamplificationefficiencyobtainedaspartoftheprimerconcentrationevaluation. Figure4.9.Differencesinamplificationefficiencyassociatedtotheuseofdifferentprimerconcentrations 4.3.2.3. Limitofdetection,efficiencyanddynamicrangeestimation Standardcurveanalysisprovedanefficiencyof92.4%andcorrelationofR2=0.999(figure 4.10).
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 228 Figure4.10.StandardcurveforM.hyorhinisrpoBqPCR Figure4.11.DynamicrangeforM.hyorhinisrpoBqPCR.Reddotsrepresentmultiplestandardsforeachdilution LODevaluationprovedasensitivityoflessthan3genomecopyequivalents,with10 copiesbeingreliablydetectedbetweentheupperandlower95%confidencelevel(figure4.11).
ChapterIV–Developmentofdiagnostictechniques 229 4.3.2.4. EvaluationofclinicalandresearchDNAsamples Specificitytestingdemonstrateda100%correlationwithPCR/DGGEresults.Noother Mycoplasmaspeciesorporcinebacterialspecieswasamplified.TheqPCRresultsofeachsample, includingtheirrelativecopynumbercanbeobservedinappendix4.2. Relativecopynumbervaluesobtainedrangedfrom4.75to1.54x105copiesofM. hyorhinis.Nostatisticallysignificantdifferenceswereobservedbetweenthebacterialloads detectedinthedifferentanimalgroupsatthesameweekofsamplingwhenanalysingthe samplesobtainedduringtheexperimentalinfectionexperiment.Thislackofstatistical differenceswasalsoobservedbetweentheloaddetectedinnasalswabsandlungtissuesamples obtainedfromthesamegroup. 4.4. Discussion M.hyorhinisrepresentsanexcellentexampleofanemergingendemicpathogen.Arecent reportpublishedbyPalzerandco‐authors(2008)provingthestatisticalassociationbetween diseasedanimalsshowingsignsofpneumoniaandthepresenceofM.hyorhinisbyPCRvindicates thispathogeninporcinerespiratorydiseasewithaprimaryroleintheporcinerespiratorydisease complex. Serology Thedataobtainedfromtestingfieldserumsamples(setC,n=798)usingthenewiELISA testdevelopedaspartofthisthesisevidencedaclearseroconversionagainstM.hyorhinisinthe
Chapter4–Appendices
ChapterIV‐Appendices 239 Appendix4.1.Cloningreagents ‐IPTGstocksolution(0.1M) IPTG1.2g Addwaterto50mlfinalvolume. Filtersterilizeandstoreat4°C. ‐X‐Gal(2ml) 5‐bromo‐4‐chloro‐3‐indolyl‐β‐D‐galactoside100mg Dissolvein2mlN,N´‐dimethylformamide. Coverwithaluminiumfoilandstoreat–20°C. ‐LBmedium(perlitre) Bacto®‐tryptone(BD)10g Bacto®‐yeastextract(BD)5g NaCl5g AdjustpHto7.0withNaOH.
ChapterIV‐Appendices 240 ‐LBplateswithampicillin Add15gagarto1litreofLBmedium. Autoclave. Allowthemediumtocoolto50°Cbeforeaddingampicillintoafinalconcentrationof100 μg/ml. Pour30–35mlofmediuminto85mmPetridishes. Lettheagarharden. Storeat4°Cforupto1monthoratroomtemperatureforupto1week. ‐LBplateswithampicillin/IPTG/X‐Gal MaketheLBplateswithampicillinasabove;thensupplementwith0.5mMIPTGand80 μg/mlX‐Galandpourtheplates. Alternatively,100μlof100mMIPTGand20μlof50mg/mlX‐Galmaybespreadoverthe surfaceofanLBampicillinplateandallowedtoabsorbfor30minutesat37°Cpriortouse.
ChapterIV‐Appendices 241 ‐SOCmedium(100ml) Bacto®‐tryptone2g Bacto®‐yeastextract0.5g 1MNaCl1ml 1MKCl0.25ml 2MMg2+stock,filter‐sterilized1ml 2MGlucose,filter‐sterilized1ml AddBacto®‐tryptone,Bacto®‐yeastextract,NaClandKClto97mldistilledwater. Stirtodissolve.Autoclaveandcooltoroomtemperature. Add2MMg2+stockand2Mglucose,eachtoafinalconcentrationof20mM.Bringto100 mlwithsterile,distilledwater.ThefinalpHshouldbe7.0. 2MMg2+stock MgCl2∙6H2O20.33g MgSO4∙7H2O24.65g Adddistilledwaterto100ml.Filtersterilize.
ChapterIV‐Appendices 242 Appendix4.2.qPCRresults Table1.qPCRresults–fieldsubmissions IDPCR/DGGEresultCq Relative copy number IDPCR/DGGEresultCq Relative copy number 101P11M.arginini‐ ‐ 279P11M.hyorhinis16.421.54x105 102P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 282P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 105P11Negative‐ ‐ 283P10M.hyosynoviae‐ ‐ 106P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 287P11Unidentifiedband‐ ‐ 108P11Negative‐ ‐ 28P11M.hyorhinis28.141.45x102 113P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 292P10M.hyorhinis andM. hyopneumoniae 29.217.69x101 14P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 293P11M.hyorhinis andM. hyopneumoniae 28.511.16x102 151P11Negative‐ ‐ 294P11M.hyorhinis andM. hyopneumoniae 32.381.16x101 155P11M.hyorhinis24.841.03x103296P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 157P11Negative‐ ‐ 29P10M.hyorhinis andM. hyopneumoniae 31.981.48x101 158P11M.hyorhinis 300P10M.hyorhinis andM. hyopneumoniae 24.131.57x103 15P10Negative‐ ‐ 308P10M.hyorhinis20.641.26x104 165P10Negative‐ ‐ 30P10M. hyorhinis andM. hyopneumoniae 33.894.75 165P11Negative‐ ‐ 30P11M.arginini‐ ‐ 176P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 31P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 179P11M.hyorhinis16.481.49x105328P11Negative‐ ‐ 184P10Negative‐ ‐ 336P10Negative‐ ‐ 184P11Negative‐ ‐ 347P10Negative‐ ‐ 186P11Negative‐ ‐ 362P10M.hyorhinis20.151.68x104 187P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 365P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 188P10M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 29.217.69x101374P10M.hyorhinis21.348.27x103 188P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 375P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 192P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 376P10M.hyorhinis25.616.53x102 194P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 378P10M.arginini‐ ‐ 196P11M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 25.168.55x102381P10M.hyorhinis27.282.23x102 197P10Nomycoplasmas‐ ‐ 382P10M.arginini‐ ‐ 197P11M.hyorhinis16.711.30x105393P10M.arginini‐ ‐
ChapterIV‐Appendices 243 1P10M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 33.445.74396P10M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 26.873.08x102 203P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 39P11M.suis‐ ‐ 204P11M.hyorhinis28.061.52x1023P10M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 17.169.94x104 20P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 42P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 216P10Negative‐ ‐ 43P10Negative‐ ‐ 216P11Negative‐ ‐ 477P10M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 20.741.18x104 217P11Negative‐ ‐ 54P11Negative‐ ‐ 219P10Negative‐ ‐ 55P11Negative‐ ‐ 232P10Negative‐ ‐ 59P11Negative‐ ‐ 242P10Negative‐ ‐ 60P11Negative‐ ‐ 242P11M.hyorhinis24.441.30x10363P11Negative‐ ‐ 246P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 65P11Negative‐ ‐ 249P11M.arginini‐ ‐ 73P11M.hyopneumoniae‐ ‐ 24P11M.hyorhinis21.866.08x1037P11M.hyorhinis18.255.20x104 253P10Negative‐ ‐ 81P11M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 29.217.69x101 25P10M.hyorhinis30.583.39x10182P11M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 32.779.24 261P10Negative‐ ‐ 83P10M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 27.941.63x102 261P11M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 24.631.17x10383P11Negative‐ ‐ 263P10Negative‐ ‐ 84P10M.hyorhinis22.613.89x103 264P10Negative‐ ‐ 86P11M.arginini‐ ‐ 266P10Negative‐ ‐ 87P11M.arginini‐ ‐ 267P10M.hyosynoviae‐ ‐ 88P10M.hyorhinis16.611.38x105 268P10Negative‐ ‐ 89P10M.hyosynoviae‐ ‐ 268P11Negative‐ ‐ 8P10M.hyorhinis21.348.27x103 269P11M.hyorhinis30.682.96x10190P10M.floculare‐ ‐ 26P10M.hyorhinis21.626.55x10390P11M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 27.352.16x102 273P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 91P10M.hyorhinis30.673.03x101 275P11M.hyorhinisandM. hyopneumoniae 30.752.85x10195P10Nomycoplasmas‐ ‐ 278P10M.hyopneumoniae‐ ‐ 9P10Nomycoplasmas‐ ‐
ChapterIV‐Appendices 244 Table2.qPCRresults–experimentalinfection.Cqandrelativecopynumberinbrackets.(aPositive byPCR/DGGEagainstM.hyorhinisbPositivebyPCR/DGGEagainstM.hyopneumoniae) Nasalswabs(DPI)Lungtissue 07142128PM(28DPI) M.hyorhinis Rmr16 127a‐ ‐ ‐ +a(18.69, 3.72x104)‐ ‐ 129a‐ ‐ ‐ ‐ ‐ +a(18.48,4.22 x104) 130a‐ ‐ +a(30.47, 3.36x101)‐ ‐ ‐ 132a‐ ‐ ‐ ‐ +a(18.89, 1.80x104)+a(16.81,1.13 x105) 134a‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 135a‐ ‐ ‐ +a(22.03, 3.89 x103)‐ ‐ M.hyorhinis 67p07 111b‐ ‐ ‐ ‐ ‐ +a(25.78,4.13 x102) 113b‐ ‐ +a(31.48, 1.96x101)‐ +a(29.33, 6.63 x101)+a(20.68,1.13 x104) 124b‐ ‐ +a(30.64, 3.04x101)‐ ‐ ‐ 133b‐ ‐ ‐ ‐ +a(22.98, 2.89 x103)+a(22.52,2.84 x103) 136b‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 137b‐ ‐ +a(28.02, 1.44x102)‐ +a(27.46, 1.41 x102)+a(24.44,1.21 x103) M.hyorhinis 80p04 116c‐ ‐ +a(23.61, 1.99x103)‐ ‐ +a(25.16,7.93 x102) 119c‐ ‐ ‐ +a(23.13, 1.95 x103)‐ +a(22.84,3.16 x103) 122c‐ ‐ ‐ +a(22.38, 3.09 x103) +a(23.60, 2.00 x103)‐ 123c‐ ‐ +a(23.12, 1.96x103)‐ +a(23.95, 1.63 x103)+a(27.68,1.23 x102) 128c‐ +a(27.59, 1.30 x102) +a(25.61, 4.33x102)‐ +a(25.78, 5.46 x102)+a(20.85,1.03 x104) 131c‐ ‐ +a(26.96, 2.71x102) +a(26.42, 2.65 x102) +a(24.96, 8.92 x102)+a(24.46,8.74 x102) M. hyopneumoniae RVC 112d‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 114d‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 115d‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 121d‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 126d‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ Control 117e‐‐‐‐‐ ‐ 118e‐‐‐‐‐ ‐ 125e‐‐‐‐‐ ‐
ChapterIV‐Appendices 245 Table3.qPCRresults–researchsamples IDOriginCq Relative copy number IDOriginCq Relative copy number Reference strain‐ BTS‐7 United States 14.988.68x1048Canary Islands‐Spain 15.298.86x104 Rmr3Spain16.653.32x10422Canary Islands‐Spain 15.934.54x104 Rmr7Spain14.891.16x10525Canary Islands‐Spain 14.581.13x105 Rmr8Spain16.264.64x10436Canary Islands‐Spain 16.313.25x104 Rmr9Spain14.679.89x10445Canary Islands‐Spain 14.501.20x105 Rmr10Spain14.971.01x10546Canary Islands‐Spain 16.133.68x104 Rmr11Spain15.783.19x10454Canary Islands‐Spain 14.801.23x105 Rmr12Spain16.633.36x10462Canary Islands‐Spain 16.463.76x104 Rmr14Spain15.041.17x10565Canary Islands‐Spain 14.951.24x105 Rmr15Spain16.424.68x10476Canary Islands‐Spain 15.803.15x104 Rmr16Spain15.131.02x105DCanary Islands‐Spain 15.448.95x104 Rmr17Spain16.803.40x104PCanary Islands‐Spain 14.431.12x105 Rmr18Spain15.623.57x104UCanary Islands‐Spain 15.764.49x104 Rmr19Spain14.828.59x104ZCanary Islands‐Spain 16.123.26x104 Rmr20Spain14.529.79x1048B1Canary Islands‐Spain 14.351.19x105 Rmr21Spain15.963.64x104Ove1Canary Islands‐Spain 16.143.22x104 Rmr22Spain14.191.18x105GC37Canary Islands‐Spain 15.594.45x104 4 Canary Islands‐ Spain 15.973.18x104GC91Canary Islands‐Spain 15.793.60x104
Conclusiones 252 Cuarta: M.hyorhinisencapazdeproducirlesionesrespiratoriasindistinguiblesanivel macroscópicoehistopatológicodeaquellasobservadasencasosdeNEPcausadosporM. hyoneumoniae,ademásdedemostrarseunavariabilidadenlavirulenciadecepasdecampode M.hyorhinis. Quinta: Elusodeinoculacióntrans‐traquealencombinaciónconlaaplicacióndeisofluoranocomo agenteanestésicopuedeserusadosatisfactoriamenteparaeldesarrollodemodelos experimentalesdeinfeccióncausadospormicoplasmaencerdosademásdeproducirunamejora enlareproducibilidadybienestaranimaldebidoalimitadainvasividadyrápidainduccióny recuperacióndelosanimalestraslaanestesia. Sexta: ElusodePCR/DGGEparaelseguimientodelaexcreciónopresenciadeM.hyorhinisyM. hyopneumoniaeenhisoposnasalesytejidopulmonaresdemostrósergranutilidadaunquela correlaciónentrelosresultadosobtenidosentrelosdiferentestiposdemuestraesbaja.El análisisdetejidopulmonarpresentóunamayorcorrelaciónconlaspresentaciónylesiones macroymicroscópicasporlosedebeconsiderarcomounamuestraindispensableeninfecciones experimentalesconestosmicroorganismos.
Conclusiones 253 Séptima: LatécnicadeWesternblottingpresentaunagranutilidadparaelestudiodelaevolución delarespuestainmuneyparaeldiagnósticoserológicodeM.hyorhinis.Asuvezelhallazgode variasproteínasinmunodominates,entrelasquedestacanlaspresentadasenlaregión comprendidaentrelos40y46kDadepesomolecularaparente,presentanungranpotencial paraserutilizadaseneldesarrollodetécnicasdediagnósticomejoradasademásdepoderjugar unpapeldentrodeldesarrollodevacunasdesubunidadorecombinantesfrentealaenfermedad causadaporM.hyorhinis. Octava: ElusodelatécnicadeELISAindirectoparaladeteccióndeM.hyorhinispuedeserútilpara elestudiosdeseroprevalenciaenM.hyorhinisademásdepresentarelpotencialdeser combinadaconlatécnicadeWesternblottingconelfindeproducirunanálisisserológicomás sensibleyespecífico. Novena: LatécnicadeqPCRaplicadaaladeteccióndeM.hyorhinisdemostróserunatécnica rápidayfiableparaladeteccióndeADNdeestemicroorganismo,comounaaltasensibilidad, menora10copias,yun100%deespecificidadycorrelaciónconlosresultadosobtenidospor PCR/DGGE.Además,lacapacidaddecuantificaciónpermitequeestatécnicapuedaserusada
Conclusiones 254 comoindicadordelacargabacterianaquepuedaservircomodatasuplementarioparaelanálisis delaposibleimplicacióndeM.hyorhinisencuadrosdeneumoníaporcina. Decima: Lafaltadediferenciasestadísticamentesignificativasentreelnúmerodecopiasrelativo deM.hyorhinisencontradaengruposcondiferentesgradosdelesionespulmonaresanivel microymacroscópicosugierequelasdiferenciasenvirulenciaentrecepasdeeste microorganismonoestánasociadasaunincrementoenelnúmerodecélulasdeM.hyorhinisen hisoposnasalesotejidopulmonar,debiendoseprobablementeavariacionesgenéticas intraespecie.
Resumen
Resumen 259 6. Resumen AunqueelpapeldeMycoplasmahyorhiniscomoorganismopatógenoenganadoporcino sehaencontradoasociadoporlogeneralacuadrosdeartritis,otitisypoliserositis,diversos estudiosepidemiológicorecienteshansidocapacesdedemostrarlaposibleimplicacióndeeste microorganismocomoagenteetiológicoprimarioencuadrosdeenfermedadrespiratoriaen cerdos,conunapresentaciónclínicacompatibleconaquellacausadaporM.hyopneumoniae,el agenteetiológicoclásicodelaneumoníaenzoóticaporcina,yconcuadrosdeenfermedad respiratoriaasociadaalcomplejorespiratorioporcino. Debidoallimitadoconocimientodelavariabilidadgenéticayantigénicadeeste microorganismodecidimosenfocarlaprimeradepartedeestatesisalestudioydesarrollode diversastécnicasdetipificaciónmolecularparaelanálisisdeM.hyorhinis.Dentrodeestegrupo detécnicasdesarrolladas,entrelasqueseencontraronlastécnicasdeRAPD,PFGE,Southern blotting,cabedestacarlatécnicadeVNTR,quetrasnuestroanálisisdestacacomolaherramienta deelecciónparalatipificaciónyanálisisdelaepidemiologíamoleculardeM.hyorhinis.Enloque respectaalanálisisantigénicosedemostróunaescasavariabilidadentreaisladosconorígenes geográficosdistantes,evidenciándoselapresenciadecomponentesantigénicos inmunodominantesaltamenteconservadosquepuedenjugarunpapelimportanteenelfuturo desarrollodeherramientasenfocadasalaprevenciónycontroldeestemicroorganismo,como puedeserelcasodevacunasdesubunidadesorecombinantes. Juntoconelestudiodelavarabilidadproteicaygenética,yconelfindedemostrarla capacidaddeM.hyorhinisparacausarcuadrosdeneumoníaenlechones,sedesarrollóun
Resumen 260 modeloexperimentaldeinfecciónenestosanimales.Graciasaestemodelosepudodemostrar comoM.hyorhinisescapazdeproducirlesionespulmonaresindistinguiblesanivelmicroy macroscópicadeaquellasproducidasporelagenteclásicodelaNEP,M.hyopenumoniae.Estos datos,ademásdedemostrarlaevidenciaobservadaenestudiosepidemiológicosdecampo, ponenendudatodosaquellosresultadosdiagnósticosbasadosúnicamenteenlaevidencia clínicaypatológicasindemostracióndelagenteetilógico. ConelfindemejorarlasherramientasdiagnósticasaplicadasaM.hyorhinisypara proporcionarherramientasfiablesparaladeteccióndelarespuestainmuneypresenciadeeste microorganismoencerdosdecidimosdesarrollardostécnicasampliamenteempleadasenel diagnósticodeenfermedadeneláreadelasanidadanimal,latécnicadelELISAindirectoparala deteccióndeanticuerposfrenteaM.hyorhinisylaPCRcuantitativaatiemporealparala detecciónrápida,sensibleyespecíficadeADNdeestemicroorganismo.Ambastécnicas demostraronserdegranutilidadparaelanálisisdeinfeccionescausadasporM.hyorhinisyjunto conlatécnicadeWesternblottingdesarrolladaenestatesissuponenunacontribuciónrealenel campodeldiagnósticoveterinarioaplicadoalanálisisdeinfeccionescausadasporeste importantemicroorganismopatógenoporcino.
Referenciasbibliográficas
Referenciasbibliográficas 271 AarestrupFM,FriisNF,SzancerJ.(1998).AntimicrobialsusceptibilityofMycoplasmahyorhinisin aliquidmediumcomparedtoadiscassay.ActaVetScand.39(1):145‐7. AarestrupFM,FriisNF.(1998).AntimicrobialsusceptibilitytestingofMycoplasmahyosynoviae isolatedfrompigsduring1968to1971andduring1995and1996.VetMicrobiol.Mar15;61(1‐ 2):33‐9. AhrensP,KokotovicB,Hagedorn‐OlsenT,FriisNF.(1996).IdentificationofMycoplasma hyosynoviaeinclinicalsamplesbyPCR.11thInternationalOrganisationofMycoplasmology Conference,Orlando,Florida,USA. Allix‐BéguecC,HarmsenD,WenigerT,SupplyP,NiemannS.(2008).Evaluationanduser‐strategy ofMIRU‐VNTRplus,amultifunctionaldatabaseforonlineanalysisofgenotypingdataand phylogeneticidentificationofMycobacteriumtuberculosiscomplexisolates.JClinMicrobiol, 46(8):2692‐2699. AlmagorM,KahaneI,GilonC,YatzivS.(1986).Protectiveeffectsoftheglutathioneredoxcycle andvitaminEonculturedfibroblastsinfectedbyMycoplasmapneumoniae.InfectImmun. Apr;52(1):240‐4. AlmagorM,KahaneI,WieselJM,YatzivS.(1985).Humanciliatedepithelialcellsfromnasal polypsasanexperimentalmodelforMycoplasmapneumoniaeinfection.InfectImmun. May;48(2):552‐5. AlmagorM,KahaneI,YatzivS.(1984).Roleofsuperoxideanioninhostcellinjuryinducedby Mycoplasmapneumoniaeinfection.Astudyinnormalandtrisomy21cells.JClinInvest. Mar;73(3):842‐7. AltmanDG(1991).Practicalstatisticsformedicalresearch.En:CRCTextsinStatisticalScience Series.ChapmanandHall(eds.).London. AltmanDG,BlandJM.(1994).Diagnostictests2:Predictivevalues.BMJ.Jul9;309(6947):102.
Referenciasbibliográficas 272 AltschulSF,GishW,MillerW,MyersEW,LipmanDJ.(1990).Basiclocalalignmentsearchtool.J MolBiol.Oct5;215(3):403‐10. AmeriM,ZhouEM,HsuWH.(2006).Westernblotimmunoassayasaconfirmatorytestforthe presenceofanti‐Mycoplasmahyopneumoniaeantibodiesinswineserum.JVetDiagnInvest. Mar;18(2):198‐201. Andrada,M.(2001).EstudioEtiopatogénicodelaNeumoníaEnzoóticaPorcina(NEP).Tesis doctoral.FacultaddeVeterinaria.UniversidaddeLasPalmasdeGranCanaria. Anónimo.(2008).Perineumoníacontagiosabovina.ManualdelaOIEsobreanimalesterrestres. Capítulo2.4.9.pp.774‐787. ArmstrongCH,FreemanMJ,Sands‐FreemanL,Lopez‐OsunaM,YoungT,RunnelsLJ.(1983). Comparisonoftheenzyme‐linkedimmunosorbentassayandtheindirecthemagglutinationand complementfixationtestsfordetectingantibodiestoMycoplasmahyopneumoniae.CanJComp Med.Oct;47(4):464‐70. ArtiushinS,StipkovitsL,MinionFC.(1993).Developmentofpolymerasechainreactionprimersto detectMycoplasmahyopneumoniae.MolCellProbes.Oct;7(5):381‐5. AssunçãoP,DelaFeC,RamírezAS,GonzálezLlamazaresO,PovedaJB.(2005).Proteinand antigenicvariabilityamongMycoplasmahyopneumoniaestrainsbySDS‐PAGEandimmunoblot. VetResCommun.Oct;29(7):563‐74. Assunção,PA.(2003).AislamientoeIdentificacióndemicoplasmasporcinos.Aplicacióndela citrometríadeflujoalestudiodeMycoplasmahyopneumoniae.TesisDoctoral.Departamentode Morfología,UniversidaddeLasPalmasdeGranCanaria. BaekboP,MadsenKS,AagardM,SzancerJ.(1994).EradicationofMycoplasmahyopneumoniae frominfectedherdswithoutrestocking.En:Proceedingsofthe13thInternationalPigVeterinary SocietyCongressBangkok,Thailand,p135.
Referenciasbibliográficas 273 BannermanES,NicoletJ.(1971).IsolationandidentificationofporcineMycoplasmain Switzerland.SchweizArchTierheilkd.Dec;113(12):697‐710. Bashiruddin,JB.ExtractionofDNAfromMycoplasma.(1998).En:MethodsinMolecularBiology. MilesRJ,NicholasRAJ(eds.).HumanaPress,Totowa,NewJersey.Vol.104,pp.141–144. BaskervilleA.(1972).Developmentoftheearlylesionsinexperimentalenzooticpneumoniaof pigs:anultrastructuralandhistologicalstudy.ResVetSci.Nov;13(6):570‐8. BenAissa‐FenniraF,SassiA,BouguerraA,Benammar‐ElgaaiedA.(2011).Immunoregulatoryrole forapublicIgMidiotypeintheinductionofautoimmunediseasesinMycoplasmapneumoniae infection.ImmunolLett.May;136(2):130‐7. BenderJB,HedbergCW,BesserJM,BoxrudDJ,MacDonaldKL,OsterholmMT.(1997). SurveillancebymolecularsubtypeforEscherichiacoliO157:H7infectionsinMinnesotaby molecularsubtyping.NEnglJMed.Aug7;337(6):388‐94. BifaniP,KurepinaN,MathemaB,WangXM,KreiswirthB.(2009).GenotypingofMycobacterium tuberculosisclinicalisolatesusingIS6110‐basedrestrictionfragmentlengthpolymorphism analysis.MethodsMolBiol.551:173‐88. BikandiJ,SanMillánR,RementeriaA,GaraizarJ.(2004).Insilicoanalysisofcompletebacterial genomes:PCR,AFLP‐PCR,andendonucleaserestriction.Bioinformatics.20:798‐9. BlankWA,EricksonBZ,StemkeGW.(1996).Phylogeneticrelationshipsoftheporcine mycoplasmasMycoplasmahyosynoviaeandMycoplasmahyopharyngis.IntJSystBacteriol. Oct;46(4):1181‐2. BloweyRW.(1993).Mycoplasmahyosynoviaearthritis.PigVet.J.30‐72. BoatmanES,KennyGE.(1971).MorphologyandultrastructureofMycoplasmapneumoniae spherules.JBacteriol.Jun;106(3):1005‐15.
Referenciasbibliográficas 274 BogemaDR,ScottNE,PadulaMP,TacchiJL,RaymondBB,JenkinsC,CordwellSJ,MinionFC, WalkerMJ,DjordjevicSP.(2011).SequenceTTKF↓QEdefinesthesiteofproteolyccleavagein Mhp683protein,anovelglycosaminoglycanandciliumadhesinofMycoplasmahyopneumoniae. JBiolChem.Dec2;286(48):41217‐29. BoyeM,JensenTK,AhrensP,Hagedorn‐OlsenT,FriisNF.(2001).Insituhybridisationfor identificationanddifferentiationofMycoplasmahyopneumoniae,Mycoplasmahyosynoviaeand Mycoplasmahyorhinisinformalin‐fixedporcinetissuesections.APMIS.Oct;109(10):656‐64. Bradbury,J.M.,Yavari,C.A.,Al‐Ankari,A.S.,Payne‐Johnson,CE.(1994).IsolationofMycoplasma hyopharyngisandFusobacteriumnecrophorumfromlameintheUK.En:Proc.10thCongressof theInternationalOrganizationforMycoplasmology.Bordeaux.lOMletter,3:488. BrooksE,FauldsD.(1989).TheMycoplasmahyopneumoniae74.5kDantigenelicitsneutralizing antibodiesandsharessequencesimilaritywithheat‐shockproteins.Vaccine.89:265–269. BrownDR.(2010).PhylumXVI.TenericutesMurray1984a,356VP(Effectivepublication:Murray 1984b,33.).En:Bergey’sManualofSystematicBacteriology.KriegNR,StaleyJT,BrownDR, HedlundBP,PasterBJ,WardNL,LudwigW,WhitmanWB(eds.).Springer,NewYork.pp567‐723. BruggmannS,KellerH,BertschingerHU,EngbergB.(1977).Quantitativedetectionofantibodies toMycoplasmasuipneumoniaeinpigs'serabyanezyme‐linkedimmunosorbentassay.VetRec. Aug6;101(6):109‐11. BurnettTA,DinklaK,RohdeM,ChhatwalGS,UphoffC,SrivastavaM,CordwellSJ,GearyS,LiaoX, MinionFC,WalkerMJ,DjordjevicSP.(2006).P159isaproteolyticallyprocessed,surfaceadhesin ofMycoplasmahyopneumoniae:defineddomainsofP159bindheparinandpromoteadherence toeukaryotecells.MolMicrobiol.May;60(3):669‐86. BustinSA,BenesV,GarsonJA,HellemansJ,HuggettJ,KubistaM,MuellerR,NolanT,PfafflMW, ShipleyGL,VandesompeleJ,WittwerCT.(2009).TheMIQEguidelines:minimuminformationfor publicationofquantitativereal‐timePCRexperiments.ClinChem.Apr;55(4):611‐22.
Referenciasbibliográficas 275 CaiHY,vanDreumelT,McEwenB,HornbyG,Bell‐RogersP,McRaildP,JosephsonG,MaxieG. (2007).ApplicationandfieldvalidationofaPCRassayforthedetectionofMycoplasma hyopneumoniaefromswinelungtissuesamples.JVetDiagnInvest.Jan;19(1):91‐5. CalcuttMJ,FoeckingMF,RosalesRS,EllisRJ,NicholasRA.(2012).Genomesequenceof MycoplasmahyorhinisstrainGDL‐1.JBacteriol.Apr;194(7):1848. CalsamigliaM,PijoanC,TrigoA.(1999a).Applicationofanestedpolymerasechainreactionassay todetectMycoplasmahyopneumoniaefromnasalswabs.JVetDiagnInvest.May;11(3):246‐51. CalsamigliaM,PijoanC,BoschGJ.(1999b).ProfilingMycoplasmahyopneumoniaeinfarmsusing serologyandanestedPCRtechnique.SwineHealthProd.7(6):263‐268. CalusD,BaeleM,MeynsT,deKruifA,ButayeP,DecostereA,HaesebrouckF,MaesD.(2007). ProteinvariabilityamongMycoplasmahyopneumoniaeisolates.VetMicrobiol.Mar10;120(3‐ 4):284‐91. CardonaAC,PijoanC,DeeSA.(2005).AssessingMycoplasmahyopneumoniaeaerosolmovement atseveraldistances.VetRec.Jan15;156(3):91‐2. CaronJ,OuardaniM,DeaS.(2000a).DiagnosisanddifferentiationofMycoplasma hyopneumoniaeandMycoplasmahyorhinisinfectionsinpigsbyPCRamplificationofthep36and p46genes.JClinMicrobiol.Apr;38(4):1390‐6. CaronJ,SawyerN,BenAbdelMoumenB,CheikhSaadBouhK,DeaS.(2000b).Species‐specific monoclonalantibodiestoEscherichiacoli‐expressedp36cytosolicproteinofMycoplasma hyopneumoniae.ClinDiagnLabImmunol.Jul;7(4):528‐35. ChalkerV,StockiT,LittD,BerminghamA,WatsonJ,FlemingD,HarrisonT.(2012).Increased detectionofMycoplasmapneumoniaeinfectioninchildreninEnglandandWales,October2011 toJanuary2012.EuroSurveill.Feb9;17(6).pii:20081.
Referenciasbibliográficas 276 ChambaudI,WróblewskiH,BlanchardA.(1999).Interactionsbetweenmycoplasmalipoproteins andthehostimmunesystem.TrendsMicrobiol.Dec;7(12):493‐9. ChanMS,MaidenMC,SprattBG.(2001).Database‐drivenmultilocussequencetyping(MLST)of bacterialpathogens.Bioinformatics.Nov;17(11):1077‐83. CheikhSaadBouhK,ShareckF,DeaS.(2003).MonoclonalantibodiestoEscherichiacoli‐ expressedP46andP65membranousproteinsforspecificimmunodetectionofMycoplasma hyopneumoniaeinlungsofinfectedpigs.ClinDiagnLabImmunol.May;10(3):459‐68. ChenAY,FrySR,DaggardGE,MukkurTK.(2008).Evaluationofimmuneresponsetorecombinant potentialprotectiveantigensofMycoplasmahyopneumoniaedeliveredascocktailDNAand/or recombinantproteinvaccinesinmice.Vaccine.Aug12;26(34):4372‐8. ChenJR,LinJH,WengCN,LaiSS.(1998).Identificationofanoveladhesin‐likeglycoproteinfrom Mycoplasmahyopneumoniae.VetMicrobiol.May;62(2):97‐110. ChengX,NicoletJ,PoumaratF,RegallaJ,ThiaucourtF,FreyJ.(1995).InsertionelementIS1296in Mycoplasmamycoidessubsp.mycoidessmallcolonyidentifiesaEuropeanclonallinedistinct fromAfricanandAustralianstrains.Microbiology.Dec;141(Pt12):3221‐8. CherryJJ,LeyDH,AltizerS.(2006).GenotypicanalysesofMycoplasmagallisepticumisolatesfrom songbirdsbyrandomamplificationofpolymorphicDNAandamplified‐fragmentlength polymorphism.JWildlDis.Apr;42(2):421‐8. ChristensenG,SørensenV,Mousing,J.(1999).Diseasesofrespiratorysystem.En:Diseasesof Swine.StrawBE,D’AllaireS,MengelingW,TaylorDJ(eds.).IowaUniversityPress,Ames,Iowa. pp.913–940. CittiC,WiseKS.(1995).Mycoplasmahyorhinisvlpgenetranscription:criticalroleinphase variationandexpressionofsurfacelipoproteins.MolMicrobiol.Nov;18(4):649‐60.
Referenciasbibliográficas 277 CittiC,KimMF,WiseKS.(1997).ElongatedversionsofVlpsurfacelipoproteinsprotect Mycoplasmahyorhinisescapevariantsfromgrowth‐inhibitinghostantibodies.InfectImmun. May;65(5):1773‐85. CittiC,PoumaratF,LeGrandD,BergonierD,BeierT,BrankM,GlewMD,RosengartenR.(1999). Antigenicvariationinmycoplasmas:past,presentandfuture.En:EUR18756‐COST826‐ Mycoplasmasofruminants:pathogenicity,diagnostics,epidemiologyandmoleculargenetics. StipkovitsL,RosengartenR,FreyJ(eds.).Vol.3:1‐4. CittiC,Watson‐McKownR,DroesseM,WiseKS.(2000).Genefamiliesencodingphase‐andsize‐ variablesurfacelipoproteinsofMycoplasmahyorhinis.JBacteriol.Mar;182(5):1356‐63. ClarkLK,ArmstrongCH,FreemanCH,ScheidtAB,Sands‐FreemanL,KnoxK.(1991).Investigating thetransmissionofMycoplasmahyopneumoniaeinaswineherdwithenzooticpneumonia.Vet. Med.199186:543‐550. CohenJ.(1960).Acoefficientofagreementfornominalscales.EducationalandPsychological Measurement.20:37‐46. CollT,MorilloA.(2008).Extraccióndesangreencerdas,cerdosdeceboylechonesen maternidad.Suistécnicaclínicas.N°19,páginas54‐56. Cousin‐AlleryA,CharronA,deBarbeyracB,FremyG,SkovJensenJ,RenaudinH,BebearC. (2000).MoleculartypingofMycoplasmapneumoniaestrainsbyPCR‐basedmethodsandpulsed‐ fieldgelelectrophoresis.ApplicationtoFrenchandDanishisolates.EpidemiolInfect. Feb;124(1):103‐11. DelaFeC,AssunçãoP,RosalesRS,AntunesT,PovedaJB.(2006).Characterisationofproteinand antigenvariabilityamongMycoplasmamycoidessubsp.mycoides(LC)andMycoplasma agalactiaefieldstrainsbySDS‐PAGEandimmunoblotting.VetJ.May;171(3):532‐8.
Referenciasbibliográficas 284 Hagedorn‐OlsenT,NielsenNC,FriisNF,NielsenJ.(1999b).ProgressionofMycoplasma hyosynoviaeinfectioninthreepigherds.Developmentoftonsillarcarrierstate,arthritisand antibodiesinserumandsynovialfluidinpigsfrombirthtoslaughter.ZentralblVeterinarmedA. Nov;46(9):555‐64. HannanPC,BhogalBS,FishJP.(1982).Tylosintartrateandtiamutilineffectsonexperimental pigletpneumoniainducedwithpneumonicpiglunghomogenatecontainingmycoplasmas, bacteriaandviruses.ResVetSci.Jul;33(1):76‐88. HannanPC,WindsorGD,deJongA,SchmeerN,StegemannM.(1997).Comparative susceptibilitiesofvariousanimal‐pathogenicmycoplasmastofluoroquinolones.Antimicrob AgentsChemother.Sep;41(9):2037‐40. HansenMS,PorsSE,JensenHE,Bille‐HansenV,BisgaardM,FlachsEM,NielsenOL.(2010).An investigationofthepathologyandpathogensassociatedwithporcinerespiratorydisease complexinDenmark.JCompPathol.Aug‐Oct;143(2‐3):120‐31. HarasawaR,KoshimizuK,TakedaO,UemoriT,AsadaK,KatoI.(1991).DetectionofMycoplasma hyopneumoniaeDNAbythepolymerasechainreaction.MolCellProbes.Apr;5(2):103‐9. HarasawaR.(1999).Geneticrelationshipsamongmycoplasmasbasedonthe16S‐23SrRNA spacersequence.MicrobiolImmunol.43(2):127‐32. HariharanH,MacDonaldJ,CarnatB,BryentonJ,HeaneyS.(1992).Aninvestigationofbacterial causesofarthritisinslaughterhogs.JVetDiagnInvest.Jan;4(1):28‐30. HarrisH,AlexanderT.(1999).Methodsofdiseasecontrol.En:DiseasesofSwine(8thed.).B. StrawB,D’AllaireS,MengelingW,TaylorD(eds.).IowaStateUniversityPress,Ames,pp.1077– 1110. HayashiS,WuHC.(1990).Lipoproteinsinbacteria.JBioenergBiomembr.Jun;22(3):451‐71.
Referenciasbibliográficas 285 HeY,XuMJ,ZhouDH,ZouFC,LinRQ,YinCC,HeXH,LiangR,LiangM,ZhuXQ.(2011). SeroprevalenceofMycoplasmahyopneumoniaeinpigsinsubtropicalsouthernChina.TropAnim HealthProd.2011Mar;43(3):695‐8. HeinritziK.(1990).ThediagnosisofEperythrozoonsuisinfection.TierarztlPrax.Oct;18(5):477‐81. HenrySC.(1979).Clinicalobservationsoneperythrozoonosis.JournaloftheAmericanVeterinary MedicalAssociation.174,601. HiguchiR,FocklerC,DollingerG,WatsonR.(1993).KineticPCRanalysis:real‐timemonitoringof DNAamplificationreactions.Biotechnology(NY).Sep;11(9):1026‐30. HoelzleLE,AdeltD,HoelzleK,HeinritziK,WittenbrinkMM.(2003).Developmentofadiagnostic PCRassaybasedonnovelDNAsequencesforthedetectionofMycoplasmasuis(Eperythrozoon suis)inporcineblood.VetMicrobiol.May29;93(3):185‐96. HoelzleLE,HoelzleK,RitzmannM,HeinritziK,WittenbrinkMM.(2006).Mycoplasmasuis antigensrecognizedduringhumoralimmuneresponseinexperimentallyinfectedpigs.Clin VaccineImmunol.Jan;13(1):116‐22. HoelzleLE,HelblingM,HoelzleK,RitzmannM,HeinritziK,WittenbrinkMM.(2007a).First LightCyclerreal‐timePCRassayforthequantitativedetectionofMycoplasmasuisinclinical samples.JMicrobiolMethods.Aug;70(2):346‐54. HoelzleK,GrimmJ,RitzmannM,HeinritziK,TorgersonP,HamburgerA,WittenbrinkMM,Hoelzle LE.(2007b).UseofrecombinantantigenstodetectantibodiesagainstMycoplasmasuis,with correlationofserologicalresultstohematologicalfindings.ClinVaccineImmunol. Dec;14(12):1616‐22. HoelzleLE.(2008).Haemotrophicmycoplasmas:recentadvancesinMycoplasmasuis.Vet Microbiol.Aug25;130(3‐4):215‐26.
Referenciasbibliográficas 286 HongY,GarcíaM,LevisohnS,SavelkoulP,LeitingV,LysnyanskyI,LeyDH,KlevenSH.(2005). DifferentiationofMycoplasmagallisepticumstrainsusingamplifiedfragmentlength polymorphismandotherDNA‐basedtypingmethods.AvianDis.Mar;49(1):43‐9. Hovind‐HougenK,FriisNF.(1991).MorphologicalandultrastructuralstudiesofMycoplasma flocculareandMycoplasmahyopneumoniaeinvitro.ResVetSci.Sep;51(2):155‐63. HsuFS,LiuMC,ChouSM,ZacharyJF,SmithAR.(1992).Evaluationofanenzyme‐linked immunosorbentassayfordetectionofEperythrozoonsuisantibodiesinswine.AmJVetRes. Mar;53(3):352‐4. HsuT,MinionFC.(1998).IdentificationoftheciliumbindingepitopeoftheMycoplasma hyopneumoniaeP97adhesin.InfectImmun.Oct;66(10):4762‐6. HunterPR,GastonMA.(1988).Numericalindexofthediscriminatoryabilityoftypingsystems:an applicationofSimpson'sindexofdiversity.JClinMicrobiol.Nov;26(11):2465‐6. Jaccard,P.(1901).ÉtudecomparativedeladistributionfloraledansuneportiondesAlpesetdes Jura.BulletindelaSociétéVaudoisedesSciencesNaturelles.37:547–579. JacobsE,BartlA,OberleK,SchiltzE.(1995).MolecularmimicrybyMycoplasmapneumoniaeto evadetheinductionofadherenceinhibitingantibodies.JMedMicrobiol.Dec;43(6):422‐9. JägerHC,McKinleyTJ,WoodJL,PearceGP,WilliamsonS,StrugnellB,DoneS,HabernollH,Palzer A,TuckerAW.(2012).Factorsassociatedwithpleurisyinpigs:acase‐controlanalysisofslaughter pigdataforEnglandandWales.PLoSOne.7(2). JensenLT,ThorsenP,MøllerB,BirkelundS,ChristiansenG.(1998).Antigenicandgenomic homogeneityofsuccessiveMycoplasmahominisisolates.JMedMicrobiol.Aug;47(8):659‐66. JensenPT,WolstrupC,FriisNF.(1978).UtilisationofglucosebyMycoplasmasuipneumoniaeand Mycoplasmaflocculare.ActaVetScand.19(2):179‐83.
Referenciasbibliográficas 287 JensenTK,AalboekB,ButtenschønJ,FriisNF,KyrvalJ,RønsholtL.(1995).Mycoplasma hyponeumoniaeandMycoplasmahyosynoviaeinfectionincasesoffibrinouspericarditisin slaughterpigs.ActaVetScand.36(4):575‐7. JohanssonKE,HeldtanderMU,PetterssonB.(1998).CharacterizationofmycoplasmasbyPCRand sequenceanalysiswithuniversal16SrDNAprimers.MethodsMolBiol.104:145‐65. KaletaP,CallananMJ,O'CallaghanJ,FitzgeraldGF,BeresfordTP,RossRP.(2009).Exploitationof thediverseinsertionsequenceelementcontentofdairyLactobacillushelveticusstartersasa rapidmethodtoidentifydifferentstrains.JMicrobiolMethods.Oct;79(1):32‐6. KamlaV,HenrichB,HaddingU.(1996).PhylogenybasedonelongationfactorTureflectsthe phenotypicfeaturesofmycoplasmasbetterthanthatbasedon16SrRNA.Gene.May 24;171(1):83‐7. KawashimaK,YamadaS,KobayashiH,NaritaM.(1996).Detectionofporcinereproductiveand respiratorysyndromevirusandMycoplasmahyorhinisantigensinpulmonarylesionsofpigs sufferingfromrespiratorydistress.JCompPathol.Apr;114(3):315‐23. KazamaS,YagihashiT,MoritaT,AwakuraT,ShimadaA,UmemuraT.(1994).Isolationof MycoplasmahyorhinisandMycoplasmaargininifromtheearsofpigswithotitismedia.ResVet Sci.Jan;56(1):108‐10. KazamaS,YagihashiT,SetoK.(1989).PreparationofMycoplasmahyopneumoniaeantigenfor theenzyme‐linkedimmunosorbentassay.CanJVetRes.Apr;53(2):176‐81. KeimP,PriceLB,KlevytskaAM,SmithKL,SchuppJM,OkinakaR,JacksonP.J,Hugh‐JonesME. (2000).Multiple‐locusvariable‐numbertandemrepeatanalysisrevealsgeneticrelationships withinBacillusanthracis.J.Bacteriol.182,2928–2936. KennyGE,CartwrightFD.(1984).Immunoblottingfordeterminationoftheantigenicspecificities ofantibodiestotheMycoplasmatales.IsrJMedSci.Oct;20(10):908‐11.
Referenciasbibliográficas 288 KibbeWA.(2007).OligoCalc:anonlineoligonucleotidepropertiescalculator.NucleicAcidsRes. 35:May25. KimKS,KoKS,ChangMW,HahnTW,HongSK,KookYH.(2003).UseofrpoBsequencesfor phylogeneticstudyofMycoplasmaspecies.FEMSMicrobiolLett.Sep26;226(2):299‐305. KlienebergerE.(1935).Thenaturaloccurrenceofpleuropneumonia‐likeorganismsinapparent symbiosiswithStreptobacillusmoniliformisandotherbacteria.JournalofPathologyand Bacteriology.40,93‐105. KobayashiH,YamamotoK,EguchiM,KuboM,NakagamiS,WakisakaS,KaizukaM,IshiiH.(1995). Rapiddetectionofmycoplasmacontaminationincellculturesbyenzymaticdetectionof polymerasechainreaction(PCR)products.JVetMedSci.Aug;57(4):769‐71. KobayashiH,MorozumiT,MiyamotoC,ShimizuM,YamadaS,OhashiS,KuboM,KimuraK, MitaniK,ItoN,YamamotoK.(1996a).Mycoplasmahyorhinisinfectionlevelsinlungsofpiglets withporcinereproductiveandrespiratorysyndrome(PRRS).JVetMedSci.Feb;58(2):109‐13. KobayashiH,SonmezN,MorozumiT,MitaniK,ItoN,ShionoH,YamamotoK.(1996b).Invitro susceptibilityofMycoplasmahyosynoviaeandM.hyorhinistoantimicrobialagents.JVetMed Sci.Nov;58(11):1107‐11. KobayashiH,NakajimaH,ShimizuY,EguchiM,HataE,YamamotoK.(2005).Macrolidesand lincomycinsusceptibilityofMycoplasmahyorhinisandvariablemutationofdomainIIandVin 23SribosomalRNA.JVetMedSci.Aug;67(8):795‐800. KobischM,BlanchardB,LePotierMF.(1993).Mycoplasmahyopneumoniaeinfectioninpigs: durationofthediseaseandresistancetoreinfection.VetRes.24(1):67‐77. KobischM,FriisNF.(1996).Swinemycoplasmoses.RevSciTech.Dec;15(4):1569‐605. Kobisch,M.(1983).PathogenicityofMycoplasmahyorhinis.YaleJ.Biol.Med.,56(5),922‐923.
Referenciasbibliográficas 289 KokotovicB,BölskeG,AhrensP,JohanssonK.(2000).GenomicvariationsofMycoplasma capricolumsubsp.capripneumoniaedetectedbyamplifiedfragmentlengthpolymorphism(AFLP) analysis.FEMSMicrobiolLett.Mar1;184(1):63‐8. KokotovicB,FriisNF,AhrensP.(2002).CharacterizationofMycoplasmahyosynoviaestrainsby amplifiedfragmentlengthpolymorphismanalysis,pulsed‐fieldgelelectrophoresisand16S ribosomalDNAsequencing.JVetMedBInfectDisVetPublicHealth.Jun;49(5):245‐52. KokotovicB,FriisNF,JensenJS,AhrensP.(1999).Amplified‐fragmentlengthpolymorphism fingerprintingofMycoplasmaspecies.JClinMicrobiol.Oct;37(10):3300‐7. KornspanJD,LysnyanskyI,KahanT,HerrmannR,RottemS,Nir‐PazR.(2011).Genomeanalysisof aMycoplasmahyorhinisstrainderivedfromaprimaryhumanmelanomacellline.JBacteriol. Sep;193(17):4543‐4. KukekovaAV,MalininAY,AyalaJA,BorchseniusSN.(1999).CharacterizationofAcholeplasma laidlawiiftsZgeneanditsgeneproduct.BiochemBiophysResCommun.Aug19;262(1):44‐9. KurthKT,HsuT,SnookER,ThackerEL,ThackerBJ,MinionFC.(2002).UseofaMycoplasma hyopneumoniaenestedpolymerasechainreactiontesttodeterminetheoptimalsamplingsites inswine.JVetDiagnInvest.Nov;14(6):463‐9. KusilukaLJ,KokotovicB,OjeniyiB,FriisNF,AhrensP.(2000).Geneticvariationsamong MycoplasmabovisstrainsisolatedfromDanishcattle.FEMSMicrobiolLett.Nov1;192(1):113‐8. KusilukaLJ,OjeniyiB,FriisNF,KokotovicB,AhrensP.(2001).Molecularanalysisoffieldstrainsof MycoplasmacapricolumsubspeciescapripneumoniaeandMycoplasmamycoidessubspecies mycoides,smallcolonytypeisolatedfromgoatsinTanzania.VetMicrobiol.Sep3;82(1):27‐37. KwonD,ChaeC.(1999).DetectionandlocalizationofMycoplasmahyopneumoniaeDNAinlungs fromnaturallyinfectedpigsbyinsituhybridizationusingadigoxigenin‐labeledprobe.VetPathol. Jul;36(4):308‐13.
Referenciasbibliográficas 290 KwonD,ChoiC,ChaeC.(2002).ChronologiclocalizationofMycoplasmahyopneumoniaein experimentallyinfectedpigs.VetPathol.Sep;39(5):584‐7. LadefogedSA,ChristiansenG.(1992).Physicalandgeneticmappingofthegenomesoffive Mycoplasmahominisstrainsbypulsed‐fieldgelelectrophoresis.JBacteriol.Apr;174(7):2199‐207. LauritsenKT,VintherHeydenreichA,RiberU,JakobsenJT,KirkbyN,JungersenG.(2010).Novel vaccineagainstMycoplasmahyosynoviae:Theimmunogeniceffectofiscom‐basedvaccinesin swine.Proceedingsofthe21stInternationalPigVeterinarySocietyCongress.July,Vancouver, Canada.p.844. LeGoffC,ThiaucourtF.(1998).AcompetitiveELISAforthespecificdiagnosisofcontagious bovinepleuropneumonia(CBPP).VetMicrobiol.Feb28;60(2‐4):179‐91. LeGrandA,KobischM.(1996).Comparisonoftheuseofavaccineandsequentialantibiotic treatmentinaherdinfectedwithMycoplasmahyopneumoniae.VetRes.27(3):241‐53. LePotierMF,AbivenP,KobischM,CrevatD,DesmettreP.(1994).AblockingELISAusinga monoclonalantibodyfortheserologicaldetectionofMycoplasmahyopneumoniae.ResVetSci. May;56(3):338‐45. LeeJ,HwangM,LeeS,HanJ,ChoE,ParkS,ParkS,SongC,ChoiI,LeeJ.(2010).M.hyorhinis vaccinepreventsmycoplasmallesionanddisease.Proceedingsofthe21stInternationalPig VeterinarySocietyCongress.July,Vancouver,Canada.p.199. LeuteneggerCM,KleinD,Hofmann‐LehmannR,MislinC,HummelU,BöniJ,BorettiF,Guenzburg WH,LutzH.(1999).Rapidfelineimmunodeficiencyvirusprovirusquantitationbypolymerase chainreactionusingtheTaqManfluorogenicreal‐timedetectionsystem.JVirolMethods. Mar;78(1‐2):105‐16.
Referenciasbibliográficas 291 LinJ,WengC.(2008).PulsedfieldelectrophoresisforthediscriminationofMycoplasmahyorhinis fromATCC27717strainandwildtypestrainsinTaiwan.Proceedingsofthe20thInternationalPig VeterinarySocietyCongress.June22–26,Durban,SouthAfrica.P02.028. LinJH,ChenSP,YehKS,WengCN.(2006).MycoplasmahyorhinisinTaiwan:diagnosisand isolationofswinepneumoniapathogen.VetMicrobiol.Jun15;115(1‐3):111‐6. LinZ,KatoA,KudouY,UedaS.(1991).Anewtypingmethodfortheavianinfectiousbronchitis virususingpolymerasechainreactionandrestrictionenzymefragmentlengthpolymorphism. ArchVirol.116(1‐4):19‐31. LindstedtBA.(2005).Multiple‐locusvariablenumbertandemrepeatsanalysisforgenetic fingerprintingofpathogenicbacteria.Electrophoresis26,2567–2582. LiuCM,KachurS,DwanMG,AbrahamAG,AzizM,HsuehPR,HuangYT,BuschJD,LamitLJ, GehringCA,KeimP,PriceLB.(2012).FungiQuant:abroad‐coveragefungalquantitativereal‐time PCRassay.BMCMicrobiol.Nov8;12:255. LiuJ,ZhouD,ChengZ,WangZ,WangL,WangS,YangD,ChaiT.(2012).Developmentand evaluationofenzyme‐linkedimmunosorbentassaybasedonrecombinantinorganic pyrophosphatasegeneantigenforthedetectionofMycoplasmasuisantibodies.ResVetSci. Aug;93(1):48‐50. LiuW,RenT,JiangB,GongM,ShouC.(2007).Mycoplasmalmembraneproteinp37promotes malignantchangesinmammaliancells.CanJMicrobiol.Feb;53(2):270‐6. LiuW,FangL,LiS,LiQ,ZhouZ,FengZ,LuoR,ShaoG,WangL,ChenH,XiaoS.(2010).Complete genomesequenceofMycoplasmahyorhinisstrainHUB‐1.JBacteriol.Nov;192(21):5844‐5. LivingstonCWJr,StairEL,UnderdahlNR,MebusCA.(1972).Pathogenesisofmycoplasmal pneumoniainswine.AmJVetRes.Nov;33(11):2249‐58.
Referenciasbibliográficas 292 LloydLC,EtheridgeJR.(1981).ProductionofarthritisbyintravenousinoculationofMycoplasma hyopneumoniae:testsonfivestrains.ResVetSci.Jan;30(1):124‐6. LorenzonS,WesongaH,YgesuL,TekleghiorgisT,MaikanoY,AngayaM,HendrikxP,ThiaucourtF. (2002).GeneticevolutionofMycoplasmacapricolumsubsp.capripneumoniaestrainsand molecularepidemiologyofcontagiouscaprinepleuropneumoniabysequencingoflocusH2.Vet Microbiol.Mar1;85(2):111‐23. LorussoA,DecaroN,GrecoG,CorrenteM,FasanellaA,BuonavogliaD.(2007).Areal‐timePCR assayfordetectionandquantificationofMycoplasmaagalactiaeDNA.JApplMicrobiol. Oct;103(4):918‐23. LudwigW,SchleiferKH.(2005).Molecularphylogenyofbacteriabasedoncomparativesequence analysisofconservedgenes.En:MicrobialPhylogenyandEvolution:ConceptsandControversies. SappJ(editor).OxfordUniversityPress,NewYork.pp70‐98. LudwigW,EuzébyJ,WhitmanWB.(2010).TaxonomicoutlinesofthephylaBacteroidetes, Spirochaetes,Tenericutes(Mollicutes),Acidobacteria,Fibrobacteres,Fusobacteria,Dictyoglomi, Gemmatimonadetes,Lentisphaerae,Verrucomicrobia,Chlamydiae,andPlanctomycetes.En: Bergey’sManualofSystematicBacteriology.KriegNR,StaleyJT,BrownDR,HedlundBP,Paster BJ,WardNL,LudwigW,WhitmanWB(eds.).Springer,NuevaYork.pp21‐24. MadecF,KobischM.(1982).Asurveyofpulmonarylesionsinbaconpigs(Observationsmadeat theslaughterhouse).Ann.Zootech.31341‐341. MaesD,DeluykerH,VerdonckM,CastryckF,MiryC,LeinA,VrijensB,deKruifA.(1998).The effectofvaccinationagainstMycoplasmahypopneumoniaeinpigherdswithacontinuous productionsystem.ZentralblVeterinarmedB.Oct;45(8):495‐505.
Referenciasbibliográficas 293 MaesD,DeluykerH,VerdonckM,CastryckF,MiryC,VrijensB,VerbekeW,ViaeneJ,deKruifA. (1999).EffectofvaccinationagainstMycoplasmahyopneumoniaeinpigherdswithanall‐in/all‐ outproductionsystem.Vaccine.Mar5;17(9‐10):1024‐34. MaesD,VerdonckM,DeluykerH,deKruifA.(1996).Enzooticpneumoniainpigs.VetQ.1996 Sep;18(3):104‐9. MaesD,SegalesJ,MeynsT,SibilaM,PietersM,HaesebrouckF.(2008).ControlofMycoplasma hyopneumoniaeinfectionsinpigs.VetMicrobiol.Jan25;126(4):297‐309. MahillonJ,ChandlerM.(1998).Insertionsequences.MicrobiolMolBiolRev.Sep;62(3):725‐74. MaidenMC,BygravesJA,FeilE,MorelliG,RussellJE,UrwinR,ZhangQ,ZhouJ,ZurthK,Caugant DA,FeaversIM,AchtmanM,SprattBG.(1998).Multilocussequencetyping:aportableapproach totheidentificationofcloneswithinpopulationsofpathogenicmicroorganisms.ProcNatlAcad SciUSA.Mar17;95(6):3140‐5. MakhanonMM,ThongkamkoonP,NeramitmansookW,WorarachA.(2008).Invitro susceptibilitytestofMycoplasmahyorhinistoantimicrobialagents.Proceedingsofthe20th InternationalPigVeterinarySocietyCongress.June22–26,Durban,SouthAfrica.p31‐10. MakhanonM,TummarukP,ThongkamkoonP,ThanawongnuwechR,PrapasarakulN.(2012). ComparisonofdetectionproceduresofMycoplasmahyopneumoniae,Mycoplasmahyosynoviae, andMycoplasmahyorhinisinlungs,tonsils,andsynovialfluidofslaughteredpigsandtheir distributionsinThailand.TropAnimHealthProd.Feb;44(2):313‐8. Manso‐SilvánL,PerrierX,ThiaucourtF.(2007).PhylogenyoftheMycoplasmamycoidescluster basedonanalysisoffiveconservedprotein‐codingsequencesandpossibleimplicationsforthe taxonomyofthegroup.IntJSystEvolMicrobiol.Oct;57(Pt10):2247‐58. Manso‐SilvánL,VileiEM,SachseK,DjordjevicSP,ThiaucourtF,FreyJ.(2009).Mycoplasmaleachii sp.nov.asanewspeciesdesignationforMycoplasmasp.bovinegroup7ofLeach,and
Referenciasbibliográficas 300 PintoFR,Melo‐CristinoJ,RamirezM.(2008).AconfidenceintervalfortheWallacecoefficientof concordanceanditsapplicationtomicrobialtypingmethods.PLoSOne.3(11):e3696. PopovicT,SchminkS,RosensteinNA,AjelloGW,ReevesMW,PlikaytisB,HunterSB,RibotEM, BoxrudD,TondellaML,KimC,NobleC,MothershedE,BesserJ,PerkinsBA.(2001).Evaluationof pulsed‐fieldgelelectrophoresisinepidemiologicalinvestigationsofmeningococcaldisease outbreakscausedbyNeisseriameningitidisserogroupC.JClinMicrobiol.Jan;39(1):75‐85. PospischilA,HoffmannR.(1982).Eperythrozoonsuisinnaturallyinfectedpigs:alightand electronmicroscopicstudy.VetPathol.Nov;19(6):651‐7. PostlethwaitP,BellB,OberleWT,SundstromP.(1996).Molecularprobefortypingstrainsof Candidaalbicans.JClinMicrobiol.Feb;34(2):474‐6. PovedaJB,RamírezAS,DelaFeC,AssunçãoP,Díaz‐BertranaL.(2002).Micoplasmas.En:Manual deMicrobiología.VadilloSM,Píriz,SD,MateosEMY.(eds.).McGraw‐Hill.Interamericana. Madrid.pp.423‐430. RangelJM,SparlingPH,CroweC,GriffinPM,SwerdlowDL.(2005).EpidemiologyofEscherichia coliO157:H7outbreaks,UnitedStates,1982‐2002.EmergInfectDis.Apr;11(4):603‐9. RautiainenE,OravainenJ,VirolainenJV,TuovinenV.(2001).RegionaleradicationofMycoplasma hyopneumoniaefrompigherdsanddocumentationoffreedomofthedisease.ActaVetScand. 42(3):355‐64. RazinS,OliverO.(1961).MorphogenesisofmycoplasmaandbacterialL‐formcolonies.J.Gen. Microbiol.24:225–237. Razin,S.(1978).Themycoplasmas.MicrobiolRev.Jun;42(2):414‐70. RazinS,HarasawaR,BarileMF.(1983).CleavagepatternsoftheMycoplasmachromosome, obtainedbyusingrestrictionendonucleases,asindicatorsofgeneticrelatednessamongstrains. IntJSystBacteriol.Apr.p.201‐206.Vol.33,No.2
Referenciasbibliográficas 301 RazinS.(1992).Peculiarpropertiesofmycoplasmas:thesmallestself‐replicatingprokaryotes. FEMSMicrobiolLett.Dec15;79(1‐3):423‐31 RazinS.(1995).MolecularpropertiesofMollicutes:Asynopsis.En:MolecularandDiagnostic ProceduresinMycoplasmology.RazinS,TullyJG(eds.).AcademicPress,SanDiego,Calif.pp.1‐ 25. RazinS,YogevD,NaotY.(1998).Molecularbiologyandpathogenicityofmycoplasmas.Microbiol MolBiolRev.Dec;62(4):1094‐156. RedondoE,MasotAJ,FernándezA,GázquezA.(2009).Histopathologicaland immunohistochemicalfindingsinthelungsofpigsinfectedexperimentallywithMycoplasma hyopneumoniae.JCompPathol.May;140(4):260‐70. ReedSE.(1971).Theinteractionofmycoplasmasandinfluenzavirusesintrachealorgancultures. JInfectDis.Jul;124(1):18‐25. Regalla,J,Gonçalves,R,NizaRibeiro,J,Duarte,L,Nicholas,R,Bashiruddin,J,DeSantis,P,Garrido Abellan,F,PenhaGonçalves,A.(2000).Developmentofimmunoblottingasadiagnostictoolfor contagiousbovinepleuropneumonia.En:COST826Agricultureandbiotechnology‐Mycoplasmas ofruminants:pathogenicity,diagnostics,epidemiologyandmoleculargenetics.BergonierD, BerthelotX,FreyJ(eds.).Rep.No.EUR19245EN,EuropeanCommission,Luxembourg,109‐112. RiegelmanRK,HirschRP.(1991).Howtostudyastudyandtestatest:criticalreadingofmedical literature.2ndedition.BolOficinaSanitPanam.Aug;111(2):152‐74. RobbID(1984).Stereo‐biochemistryandfunctionsofpolymersinmicrobialadhesionand aggregation.En:MicrobialAdhesionandAggregation.MarshallKC(editor).Springer‐Verlag, Berlin.pp39‐49. RobertsRJ.(2005).Howrestrictionenzymesbecametheworkhorsesofmolecularbiology.Proc. Natl.Acad.Sci.U.S.A.102(17):5905–8.
Referenciasbibliográficas 302 RobertsonJ,SmookE.(1976).Cytochemicalevidenceofextramembranouscarbohydrateson Ureaplasmaurealyticum(T‐strainMycoplasma).JBacteriol.Nov;128(2):658‐60. RockettRJ,TozerSJ,PeateyC,BialasiewiczS,WhileyDM,NissenMD,TrenholmeK,McCarthyJS, SlootsTP.(2011).Areal‐time,quantitativePCRmethodusinghydrolysisprobesforthe monitoringofPlasmodiumfalciparumloadinexperimentallyinfectedhumanvolunteers.MalarJ. Feb28;10:48. RosenbuschRF,MinionFC.(1992).Cellenvelope:MorphologyandBiochemistry.En: Mycoplasma:MolecularBiologyandPathogenesis.ManiloffJ,McElhaneyRN,FinchLRBaseman JB(eds.).AmericanSocietyforMicrobiology,WashingtonDC,USA,pp73‐77. RosengartenR,CittiC,GlewM,LischewskiA,DroesseM,MuchP,WinnerF,BrankM,SpergserJ. (2000).Host‐pathogeninteractionsinmycoplasmapathogenesis:virulenceandsurvival strategiesofminimalistprokaryotes.IntJMedMicrobiol.Mar;290(1):15‐25. RosengartenR,WiseKS.(1990).Phenotypicswitchinginmycoplasmas:phasevariationofdiverse surfacelipoproteins.Science.1990Jan19;247(4940):315‐8. RosengartenR,YogevD.(1996).Variantcolonysurfaceantigenicphenotypeswithinmycoplasma strainpopulations:implicationsforspeciesidentificationandstrainstandardization.JClin Microbiol.1996Jan;34(1):149‐58. RossRF,KarmonJA.(1970a).HeterogeneityamongstrainsofMycoplasmagranularumand identificationofMycoplasmahyosynoviae,sp.n.JBacteriol.Sep;103(3):707‐13. RossRF,DuncanJR.(1970b).Mycoplasmahyosynoviaearthritisofswine.JAmVetMedAssoc. Dec1;157(11):1515‐8. RossRF.(1973).PredisposingfactorsinMycoplasmahyosynoviaearthritisinswine.JInfectDis. Mar;127:Suppl:S84‐6.
Referenciasbibliográficas 303 RossRF,SpearML.(1973).RoleofthesowasareservoirofinfectionforMycoplasma hyosynoviae.AmJVetRes.Mar;34(3):373‐8. RossRF,WhittlestoneP.(1983).Recoveryof,identificationof,andserologicalresponseto porcinemycoplasmas.En:MethodsinMycoplasmology.TullyJG,RazinS.(eds.).AcademicPress. NewYork.vol11,pp.115‐127. RossRF,YoungTF.(1993).Thenatureanddetectionofmycoplasmalimmunogens.VetMicrobiol. Nov;37(3‐4):369‐80. Ross,RF.(1999).Mycoplasmaldiseases.En:DiseasesofSwine.StrawBE,D’AllaireS,Mengeling W,TaylorDJ(eds.).IowaStateUniversityPress,Ames,pp.459‐509. RurangirwaFR,McGuireTC,MagnusonNS,KiborA,ChemaS.(1987).Compositionofa polysaccharidefrommycoplasma(F‐38)recognisedbyantibodiesfromgoatswithcontagious pleuropneumonia.ResVetSci.Mar;42(2):175‐8. SabatA,Krzyszton‐RussjanJ,StrzalkaW,FilipekR,KosowskaK,HryniewiczW,TravisJ,PotempaJ. (2003).NewmethodfortypingStaphylococcusaureusstrains:multiple‐locusvariable‐number tandemrepeatanalysisofpolymorphismandgeneticrelationshipsofclinicalisolates.J.Clin. Microbiol.41,1801–1804. SachseK,SalamHS,DillerR,SchubertE,HoffmannB,HotzelH.(2010).Useofanovelreal‐time PCRtechniquetomonitorandquantitateMycoplasmabovisinfectionincattleherdswith mastitisandrespiratorydisease.VetJ.Dec;186(3):299‐303. SarradellJ,AndradaM,RamírezAS,FernándezA,Gómez‐VillamandosJC,JoverA,LorenzoH, HerráezP,RodríguezF.(2003).Amorphologicandimmunohistochemicalstudyofthebronchus‐ associatedlymphoidtissueofpigsnaturallyinfectedwithMycoplasmahyopneumoniae.Vet Pathol.Jul;40(4):395‐404.
Referenciasbibliográficas 304 ScarmanAL,ChinJC,EamensGJ,DelaneySF,DjordjevicSP.(1997).Identificationofnovelspecies‐ specificantigensofMycoplasmahyopneumoniaebypreparativeSDS‐PAGEELISAprofiling. Microbiology.Feb;143(Pt2):663‐73. SchaeverbekeT,ClercM,LequenL,CharronA,BébéarC,deBarbeyracB,BannwarthB,DehaisJ, BébéarC.(1998).GenotypiccharacterizationofsevenstrainsofMycoplasmafermentansisolated fromsynovialfluidsofpatientswitharthritis.JClinMicrobiol.May;36(5):1226‐31. SchulmanA,EstolaT,Garry‐AnderssonAS.(1970).OntheoccurrenceofMycoplasmahyorhinisin therespiratoryorgansofpigs,withspecialreferencetoenzooticpneumonia.Zentralbl VeterinarmedB.May;17(5):549‐53. SchultzKK,StraitEL,EricksonBZ,LevyN.(2012).Optimizationofanantibioticsensitivityassayfor Mycoplasmahyosynoviaeandsusceptibilityprofilesoffieldisolatesfrom1997to2011.Vet Microbiol.Jul6;158(1‐2):104‐8. SchwartzDC,CantorCR.(1984).Separationofyeastchromosome‐sizedDNAsbypulsedfield gradientgelelectrophoresis.Cell.37(1):67–75. SedgleyCM,NagelAC,ShelburneCE,ClewellDB,AppelbeO,MolanderA.(2005).Quantitative real‐timePCRdetectionoforalEnterococcusfaecalisinhumans.ArchOralBiol.Jun;50(6):575‐83. SeverianoA,PintoFR,RamirezM,CarriçoJA.(2011).AdjustedWallacecoefficientasameasure ofcongruencebetweentypingmethods.JClinMicrobiol.Nov;49(11):3997‐4000. SeymourLM,DeutscherAT,JenkinsC,KuitTA,FalconerL,MinionFC,CrossettB,PadulaM,Dixon NE,DjordjevicSP,WalkerMJ.(2010).AprocessedmultidomainMycoplasmahyopneumoniae adhesinbindsfibronectin,plasminogen,andswinerespiratorycilia.JBiolChem.Oct 29;285(44):33971‐8.
Referenciasbibliográficas 305 SeymourLM,FalconerL,DeutscherAT,MinionFC,PadulaMP,DixonNE,DjordjevicSP,Walker MJ.(2011).Mhp107isamemberofthemultifunctionaladhesinfamilyofMycoplasma hyopneumoniae.JBiolChem.Mar25;286(12):10097‐104. SheldrakeRF,GardnerIA,SaundersMM,RomalisLF.(1990).Serumantibodyresponseto Mycoplasmahyopneumoniaemeasuredbyenzyme‐linkedimmunosorbentassayafter experimentalandnaturalinfectionofpigs.AustVetJ.Feb;67(2):39‐42. SibilaM,PietersM,MolitorT,MaesD,HaesebrouckF,SegalésJ.(2009).Currentperspectiveson thediagnosisandepidemiologyofMycoplasmahyopneumoniaeinfection.VetJ.Sep;181(3):221‐ 31. SibilaM,MentaberreG,BoadellaM,HuertaE,Casas‐DíazE,VicenteJ,GortázarC,MarcoI,Lavín S,SegalésJ.(2010).Serological,pathologicalandpolymerasechainreactionstudieson Mycoplasmahyopneumoniaeinfectioninthewildboar.VetMicrobiol.Jul29;144(1‐2):214‐8. SippelKH,RobbinsAH,ReutzelR,BoehleinSK,NamikiK,GoodisonS,Agbandje‐McKennaM, RosserCJ,McKennaR.(2009).Structuralinsightsintotheextracytoplasmicthiamine‐binding lipoproteinp37ofMycoplasmahyorhinis.JBacteriol.Apr;191(8):2585‐92. SmithH,WilcoxKW.(1970).ARestrictionenzymefromHemophilusinfluenzae.I.Purificationand generalproperties.JournalofMolecularBiology51(2):379–391. SchmidhauserC,DudlerR,SchmidtT,ParishRW.(1990).Amycoplasmalproteininfluences tumourcellinvasivenessandcontactinhibitioninvitro.JCellSci.Mar;95(Pt3):499‐506. SolsonaM,LambertM,PoumaratF.(1996).Genomic,proteinhomogeneityandantigenic variabilityofMycoplasmaagalactiae.VetMicrobiol.May;50(1‐2):45‐58. SouthernEM.(1975).DetectionofspecificsequencesamongDNAfragmentsseparatedbygel electrophoresis.JMolBiol.Nov5;98(3):503‐17.
Referenciasbibliográficas 306 SplitterEJ.(1950).Eperythrozoonsuisn.sp.andEperythrozoonparvumn.sp.,2newblood parasitesofswine.Science.May12;111(2889):513‐4. StakenborgT,ViccaJ,ButayeP,MaesD,PeetersJ,deKruifA,HaesebrouckF.(2005).The diversityofMycoplasmahyopneumoniaewithinandbetweenherdsusingpulsed‐fieldgel electrophoresis.VetMicrobiol.Aug10;109(1‐2):29‐36. StakenborgT,ViccaJ,MaesD,PeetersJ,deKruifA,HaesebrouckF,ButayeP.(2006).Comparison ofmoleculartechniquesforthetypingofMycoplasmahyopneumoniaeisolates.JMicrobiol Methods.Aug;66(2):263‐75. StanbridgeE,ReffME.(1979).ThemolecularbiologyofMycoplasma.En:TheMycoplasma.Barile MF,RazinS(eds.).AcademicPress,NewYork.Vol.1,pp.157‐185. StärkKD,KellerH,EggenbergerE.(1992).Riskfactorsforthereinfectionofspecificpathogen‐ freepigbreedingherdswithenzooticpneumonia.VetRec.Dec5;131(23):532‐5. StärkKDC,ZellwegerK,MiserezR,SiegmannS,OchsH,SchmidtJ.(2004).Completederadication ofepizooticrespiratorydiseasesinswineinSwitzerland.Proceedingsofthe18thInternationalPig VeterinarySocietyCongress,Hamburg,Germany.p.338. StemkeGW,PhanR,YoungTF,RossRF.(1994).DifferentiationofMycoplasmahyopneumoniae, M.flocculare,andM.hyorhinisonthebasisofamplificationofa16SrRNAgenesequence.AmJ VetRes.Jan;55(1):81‐4. RozenS,SkaletskyHJ.(2000).Primer3ontheWWWforgeneralusersandforbiologist programmers.En:BioinformaticsMethodsandProtocols:MethodsinMolecularBiology.Krawetz S,MisenerS(eds.).HumanaPress,Totowa,NewJersey.pp.365‐386. StevensonGW.(1998).Bacterialpneumoniainswine.Proceedingsof15thInternationalPig VeterinarySocietyCongressCongress.Birmingham,England.pp11‐20
Referenciasbibliográficas 307 StraitEL,MadsenML,MinionFC,Christopher‐HenningsJ,DammenM,JonesKR,ThackerEL. (2008).Real‐timePCRassaystoaddressgeneticdiversityamongstrainsofMycoplasma hyopneumoniae.JClinMicrobiol.Aug;46(8):2491‐8. StrasserM,AbivenP,KobischM,NicoletJ.(1992).Immunologicalandpathologicalreactionsin pigletsexperimentallyinfectedwithMycoplasmahyopneumoniaeand/orMycoplasmaflocculare. VetImmunolImmunopathol.Feb15;31(1‐2):141‐53. StrasserM,FreyJ,BestettiG,KobischM,NicoletJ.(1991).Cloningandexpressionofaspecies‐ specificearlyimmunogenic36‐kilodaltonproteinofMycoplasmahyopneumoniaeinEscherichia coli.InfectImmun.Apr;59(4):1217‐22. StrawBE,BackstromL,LemanAD.Examinationofswineatslaughter.PartII.Findingsatslaughter andtheirsignificance.CompendiumonContinuingEducationforthePracticingVeterinarian. 19868,106–112. SupplyP,AllixC,LesjeanS,Cardoso‐OelemannM,Rüsch‐GerdesS,WilleryE,SavineE,deHaasP, vanDeutekomH,RoringS,BifaniP,KurepinaN,KreiswirthB,SolaC,RastogiN,VatinV,Gutierrez MC,FauvilleM,NiemannS,SkuceR,KremerK,LochtC,vanSoolingenD.(2006).Proposalfor standardizationofoptimizedmycobacterialinterspersedrepetitiveunit‐variable‐numbertandem repeattypingofMycobacteriumtuberculosis.JClinMicrobiol.2006Dec;44(12):4498‐510. SutcliffeIC,RussellRR.(1995).Lipoproteinsofgram‐positivebacteria.JBacteriol. Mar;177(5):1123‐8. SwitzerWP.(1955).Studiesoninfectiousatrophicrhinitis.IV.Characterizationofa pleuropneumonia‐likeorganismisolatedfromthenasalcavitiesofswine.AmJVetRes.Oct;16(61 Part1):540‐4. TardyF,MercierP,SolsonaM,SarasE,PoumaratF.(2007).Mycoplasmamycoidessubsp. mycoidesbiotypelargecolonyisolatesfromhealthyanddiseasedgoats:prevalenceandtyping. VetMicrobiol.Apr15;121(3‐4):268‐77.
Referenciasbibliográficas 308 TauxeRV.(2006).Molecularsubtypingandthetransformationofpublichealth.Foodborne PathogDis.Spring;3(1):4‐8. TenoverFC,ArbeitRD,GoeringRV.(1997).Howtoselectandinterpretmolecularstraintyping methodsforepidemiologicalstudiesofbacterialinfections:areviewforhealthcare epidemiologists.MolecularTypingWorkingGroupoftheSocietyforHealthcareEpidemiologyof America.InfectControlHospEpidemiol.Jun;18(6):426‐39. ThackerEL,ThackerBJ,BoettcherTB,JayappaH.(1998).Comparisonofantibodyproduction, lymphocytestimulation,andprotectioninducedbyfourcommercialMycoplasma hyopneumoniaebacterins.SwineHealthandProduction.6(3):107–112. ThackerEL,ThackerBJ,JankeBH.(2001).InteractionbetweenMycoplasmahyopneumoniaeand swineinfluenzavirus.JClinMicrobiol.Jul;39(7):2525‐30. ThackerEL.DiagnosisofMycoplasmahyopneumoniae.(2004).AnimHealthResRev. Dec;5(2):317‐20. ThackerEL.(2006).MycoplasmalDisease.En:DiseasesofSwineStraw.BE,ZimmermannJJ, D’AllaireS,TaylorDJ(eds.).IowaStateUniversityPress,Ames.pp.701–717. ThiaucourtF,BölskeG,LibeauG,LeGoffC,LefèvrePC.(1994).Theuseofmonoclonalantibodies inthediagnosisofcontagiouscaprinepleuropneumonia(CCPP).VetMicrobiol.Aug1;41(3):191‐ 203. ThongkamkoonP,PrapasarakulN,MakhanonM,TalummukS,KleinU.(2010).Invitro susceptibilityofporcineMycoplasmatoantimicrobialagentsduring2008‐2009.Proceedingsof the21stInternationalPigVeterinarySocietyCongress.July,Vancouver,Canada.p638. TolaS,IdiniG,ManuntaD,CascianoI,RocchigianiAM,AngioiA,LeoriG.(1996).Comparisonof Mycoplasmaagalactiaeisolatesbypulsedfieldgelelectrophoresis,SDS‐PAGEand immunoblotting.FEMSMicrobiolLett.Oct1;143(2‐3):259‐65.
Referenciasbibliográficas 309 TolaS,IdiniG,RocchigianiAM,ManuntaD,AngioiPP,RoccaS,CoccoM,LeoriG.(1999). ComparisonofrestrictionpatternpolymorphismofMycoplasmaagalactiaeandMycoplasma bovisbypulsedfieldgelelectrophoresis.ZentralblVeterinarmedB.Apr;46(3):199‐206. TuckerAW,McKinleyTJ,JägerHC.(2009).Pleurisyinpigs:associatedriskfactorsandimpacton health,welfareandperformance.BritishPigExecutive(BPEX)report.http://www.bpex.org.uk/R‐ and‐D/R‐and‐D/Pleurisy.aspx Tully,JG.(1992).Mollicutes(Mycoplasmas).En:EncyclopediaofMicrobiology.Lederberg,J (editor).RockefellerUniversity,AcademiaPress,Inc.,NewYork.Vol.III. UhaaIJ,RiemannHP,ThurmondMC,FrantiCE.(1990).Theuseoftheenzyme‐linked immunosorbentassay(ELISA)inserologicaldiagnosisofMycoplasmabovisindairycattle.VetRes Commun.14(4):279‐85. UrwinR,MaidenMC.(2003).Multi‐locussequencetyping:atoolforglobalepidemiology.Trends Microbiol.Oct;11(10):479‐87. VanBelkumA,SchererS,VanLeeuwenW,WillemseD,VanAlphenL&VerbrughH.(1997). VariablenumberoftandemrepeatsinclinicalstrainsofHaemophilusinfluenzae.InfectImmun. 65:5017–5027. VanBelkumA,StruelensM,deVisserA,VerbrughH,TibayrencM.(2001).Roleofgenomictyping intaxonomy,evolutionarygenetics,andmicrobialepidemiology.ClinMicrobiolRev. Jul;14(3):547‐60. VanBelkumA.(2007).Tracingisolatesofbacterialspeciesbymultilocusvariablenumberof Tandemrepeatanalysis(MLVA).FEMSImmunolMedMicrobiol4922–27. VanLooverenM,IsonCA,IevenM,VandammeP,MartinIM,VermeulenK,RentonA,Goossens HJ.(1999).EvaluationofthediscriminatorypoweroftypingmethodsforNeisseriagonorrhoeae. ClinMicrobiol.Jul;37(7):2183‐8.